System der Lebewesen (Stefan Hintsche, 2026)

Letztes Update 01.03.2026

Home

Index

Impressum & Datenschutz

Didelphimorphia

 

 

Didelphimorphia

 

Didelphidae

 

 

Ordo Didelphimorphia Gill, 1872 (Ordnung Beutelrattenartige):       

·         134 Arten in einer Familie und 18 Gattungen, davon eine Art ausgestorben und eine Art unbeschrieben.

·         Literatur: Gill (1872).

 

Familia Didelphidae Rafinesque, 1815 (Familie Amerikanische Beutelratten):

·         134 Arten in 18 Gattungen, davon eine Art ausgestorben und eine Art unbeschrieben.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Didelphis Linnaeus, 1758; nominotypische Art Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758. Nach das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024) hat die Familie ihren Ursprung vor 23 Millionen Jahren, während Beck & Taglioretti (2020) von 24 Millionen ausgehen und Jansa, Barker & Voss (2014) von 26 Millionen Jahren.

·         Literatur: Beck & Taglioretti (2020); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Jansa, Barker & Voss (2014); Linnaeus (1758); Rafinesque (1815).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae

 

 

 

 

 

 

Caluromyinae

 

 

 

 

Glironiinae

Didelphidae

 

 

 

Didelphinae

 

 

 

 

 

Hyladelphinae

 

 

 

 

 

Familia Didelphidae Rafinesque, 1815 (Familie Amerikanische Beutelratten):

·         134 Arten in 18 Gattungen, davon eine Art ausgestorben und eine Art unbeschrieben.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Didelphis Linnaeus, 1758; nominotypische Art Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758. Nach das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024) hat die Familie ihren Ursprung vor 23 Millionen Jahren, während Beck & Taglioretti (2020) von 24 Millionen ausgehen und Jansa, Barker & Voss (2014) von 26 Millionen Jahren.

·         Literatur: Beck & Taglioretti (2020); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Jansa, Barker & Voss (2014); Linnaeus (1758); Rafinesque (1815).

 

Subfamilia Caluromyinae Kirsch, 1977 (Unterfamilie Wollbeutelratten):

·         4 Arten in zwei Gattungen.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Caluromys Allen, 1900; nominotypische Art Caluromys philander (Linnaeus, 1758).

·         Synonyme: Calaromys Miranda-Ribeiro, 1936 (Schreibfehler); Calurosmys Avila-Pires, 1964 (Schreibfehler).

·         Literatur: Allen (1900); Avila-Pires (1964); Miranda-Ribeiro (1936); Kirsch (1977); Linnaeus (1758).

 

Subfamilia Glironiinae Voss & Jansa, 2009 (Unterfamilie Buschschwanzbeutelratten):

·         1 Art in einer Gattung.

·         Literatur: Voss & Jansa (2009).

 

Subfamilia Didelphinae Rafinesque, 1815 (Unterfamilie Echte Beutelratten):

·         128 Arten in 14 Gattungen, davon eine Art ausgestorben und eine Art unbeschrieben.

·         Literatur: Rafinesque (1815).

 

Subfamilia Hyladelphinae Voss & Jansa, 2009 (Familie Peruanische Zwergbeutelratten):

·         1 Art in einer Gattung.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Hyladelphys Voss, Lunde & Simmons, 2001; nominotypische Art .Neben der rezenten Gattung Hyladelphys wird auch die fossile Gattung Sairadelphys Oliveira, Villa Nova, Goin & Avilla, 2011 (Der Gattungsname leitet sich von dem Tupi-Wort saíra für „klein“ und dem griechischen Wort δελφύς für „Gebärmutter“ ab, was sich auf die relativ kleine Körpergröße und die besondere Morphologie der Gebärmutter bei Beuteltieren bezieht) mit der Art Tocantins-Zwergbeutelratte (Sairadelphys tocantinensis Oliveira, Villa Nova, Goin & Avilla, 2011. Holotypus/Terra typica: UFPE DGEO 6745 (Bundesuniversität von Pernambuco), Höhle von Gruta dos Mouras, nahe Gemeinde Aurora do Tocantins, Bundesstaat Tocantins, Brasilien, Pleistozän. Etymologie: Das Artepitheton leitet sich nach dem Bundesstaat Tocantins benannt, in dem das Typusexemplar gefunden wurde) zu Hyladelphinae gerechnet. Der Unterfamilienname leitet sich von den griechischen Wörtern ὕλη für „Wald“ und δελφύς für „Gebärmutter“ ab.

·         Literatur: Oliveira et al. (2011); Voss & Jansa (2009).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Caluromyinae

 

 

 

 

 

Caluromys

Caluromyinae

 

 

 

 

Caluromysiops

 

 

 

 

Subfamilia Caluromyinae Kirsch, 1977 (Unterfamilie Wollbeutelratten):

·         4 Arten in zwei Gattungen.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Caluromys Allen, 1900; nominotypische Art Caluromys philander (Linnaeus, 1758).

·         Synonyme: Calaromys Miranda-Ribeiro, 1936 (Schreibfehler); Calurosmys Avila-Pires, 1964 (Schreibfehler).

·         Literatur: Allen (1900); Avila-Pires (1964); Miranda-Ribeiro (1936); Kirsch (1977); Linnaeus (1758).

 

            Genus Caluromys Allen, 1900 (Gattung Eigentliche Wollbeutelratten):

·         3 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromys philander (Linnaeus, 1758).

·         Literatur: Allen (1900); Linnaeus (1758).

 

            Genus Caluromysiops Sanborn, 1951 (Gattung Binden-Wollbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromysiops irrupta Sanborn, 1951.

·         Literatur: Sanborn (1951).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Caluromyinae > Caluromys

 

 

 

 

 

 

Caluromys philander

 Caluromys

 

 

 

 

 

Caluromys derbianus

 

 

 

 

 

 

Caluromys lanatus

 

 

 

 

 

            Genus Caluromys Allen, 1900 (Gattung Eigentliche Wollbeutelratten):

·         3 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromys philander (Linnaeus, 1758). Der Gattungsname leitet sich von den griechischen Wörtern κάλλoς für „schön“ und μῦς für „Maus“ und bezieht sich auf das hübsche Aussehen der Wollbeutelratten.

·         Literatur: Allen (1900); Linnaeus (1758).

 

Subgenus Caluromys Allen, 1900 (Untergattung Nacktschwanz-Wollbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromys philander (Linnaeus, 1758). Der Untergattungsname leitet sich von den griechischen Wörtern κάλλoς für „schön“ und μῦς für „Maus“ und bezieht sich auf das hübsche Aussehen der Wollbeutelratten.

·         Literatur: Allen (1900); Linnaeus (1758).

 

            Caluromys philander (Linnaeus, 1758) (Gelbe Wollbeutelratte/Bare-tailed Woolly Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1867.4.12.414 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt in Suriname.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphis philander beschrieben, wurde die Art zeitweise in die Gattungen Gamba (Liais, 1872) und Philander (Rehn, 1900) eingeordnet. Schließlich stellte Allen (1900) die Art in die von ihm neu geschaffene Gattung Caluromys. Häufig werden nach morphologischen Merkmalen vier Unterarten unterschieden (Gardner, 2005; Astúa, 2015, 2020, 2023). Nach molekularbiologischen Analysen (Voss, Fleck & Jansa, 2019) existieren zwar mehrere genetische Linien, die teils möglicherweise auch separate Arten darstellen, doch scheinen diese mit der aktuellen Unterarteneinteilung nicht übereinzustimmen, weshalb die Art teilweise auch als monotypisch angesehen wird (Zijlstra, 2023). Zur Klärung sind hier noch weitere Analysen notwendig. Das Artepitheton leitet sich vom griechischen Wort φίλανδρος für „Menschen liebend“ ab.

·         Unterarten:

1. Caluromys philander philander (Linnaeus, 1758) (Nördliche Nacktschwanz-Wollbeutelratte/Northern Bare-tailed Woolly Opossum).

2. Caluromys philander affinis (Wagner, 1842) (Mato-Grosso-Wollbeutelratte/Mato Grosso Bare-tailed Woolly Opossum), Holotypus/Terra typica: Typusexemplar vermutlich im Naturhistorischen Museum Wien (NMW), gesammelt im Bundesstaat Mato Grosso, Brasilien. Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Didelphys affinis beschrieben, ordnete Gardner (2005) die Form als Unterart Caluromys philander affinis ein.

3. Caluromys philander dichurus (Wagner, 1842) (Brasilianische Nacktschwanz-Wollbeutelratte/Brazilian Bare-tailed Woolly Opossum). Holotypus/Terra typica: Typusexemplar vermutlich im Naturhistorischen Museum Wien (NMW), gesammelt bei Ypanema, São Paulo, Brasilien. Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Didelphys dichura beschrieben, stellte Cabrera (1919) die Form als Unterart von philander, aber innerhalb der Gattung Philander, während Gardner (2005) schließlich die Form als Caluromys philander dichurus listete.

4. Caluromys philander trinitatis (Thomas, 1894) (Trinidad-Wollbeutelratte/Trinidad Bare-tailed Woolly Opossum). Holotypus/Terra typica: BMNH 1891.7.2.2 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt von J. H. Hart im Botanischen Garten von Trinidad, Trinidad und Tobago. Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphys (Philander) trinitatis beschrieben, überführte Thomas (1904) die Form kurze Zeit später in die Gattung Caluromys. Gardner (2005) stufte trinitatis schließlich als Unterart von C. philander ein.

·         Synonyme: Didelphis cajopolin P. L. S. Müller, 1776 (Terra typica: Suriname); Didelphis cajopollin Zimmermann, 1783 (Schreibfehler für cajopolin); Didelphis flavescens Brongniart, 1792 (Holotypus/Terra typica: Typusexemplar möglicherweise im Nationalmuseum für Naturgeschichte Paris (MNHN), gesammelt bei Cayenne, Französisch-Guayana); Didelphys longicaudata Pelzeln, 1883 (nur Name); Didelphys macrura Pelzeln, 1883 (nur Name); Caluromys trinitatis venezuelae Thomas, 1903 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1900.5.1.57 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt von E. André am 8. März 1899 bei Ypuré, Cumaná, Venezuela); Caluromys trinitatis leucurus Thomas, 1904 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1904.5.7.42 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt von Samuel M. Klages bei Maripa, Caura-Tal am unteren Orinoko, Venezuela).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 160-279 mm; Schwanzlänge 20-405 mm; Gewicht 140-390 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Trinidad und Tobago; Venezuela).

·         Literatur: Allen (1900); Astúa (2015, 2020, 2023); Brito et al. (2021); Brongniart (1792); Cabrera (1919); Gardner (2005); Liais (1872); Linnaeus (1758); Müller (1776); Pelzeln (1883); Rehn (1900); Thomas (1894, 1903, 1904); Voss, Fleck & Jansa (2019); Wagner (1842); Zimmermann (1783).

 

Subgenus Mallodelphys Thomas, 1920 (Untergattung Große Wollbeutelratten):

·         2 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromys lanatus (Olfers, 1818); eigentlich Didelphis lanigera Desmarest, 1821, doch gilt diese Form als Synonym von C. lanatus. Der Untergattungsname leitet sich von dem griechischen Wörtern μαλλός für „Wolle“ δελφύς für „Gebärmutter“ ab. Er bezieht sich einerseits auf das wollige Fell und andererseits auf die besondere Gebärmutter bzw. Jungenentwicklung der Beuteltiere.

·         Synonyme: Mallodelphis Miranda-Ribeiro, 1936 (Schreibfehler).

·         Literatur: Desmarest (1821); Miranda-Ribeiro (1936); Olfers (1818); Thomas (1920).

 

            Caluromys derbianus (Waterhouse, 1841) (Derby-Wollbeutelratte/Derby’s Woolly Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: LIVCM D.194 (Liverpool Museum), Weibchen, gesammelt in der Cauca-Schlucht, Cauca, Kolumbien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphys derbianus beschrieben und zeitweise als Unterart Philander laniger derbianus (Goldman, 1920; Allen & Barbour, 1923) gelistet, überführte Goodwin (1946) die Art in die Gattung Caluromys. Genetische Analysen (Voss, Fleck & Jansa, 2019) unterstützen auch den Artstatus. In der Vergangenheit wurden sechs oder sieben Unterarten unterschieden, meist derbianus, aztecus, centralis, fervidus, nauticus, pallidus (Astúa, 2015) und canus (Bucher & Hoffmann, 1980). Die Einteilung wird durch morphometrische Schädelanalysen (Fonseca & Astúa, 2015) und genetische Untersuchungen (Voss, Fleck & Jansa, 2019) jedoch nicht gestützt, so dass die Art aktuell als monotypisch betrachtet wird (Voss, 2022). Die Art ist nach dem Graf von Derby Edward Smith-Stanley benannt, der auch als Naturforscher tätig war.

·         Synonyme: Philander laniger guayanus Thomas, 1899 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1880.5.6.87 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt von Illingworth im Balzargebirge, Provinz Guayas, Ekuador. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005); Philander laniger pallidus Thomas, 1899 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1900.7.11.83 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 12. Oktober 1898 von H. J. Watson bei Bogava, Chiriqui, Panama. Taxonomie: Von Trouessart (1905) als Didelphy fuscogriseus pallidus eingeordnet und von Goodwin (1946) als Caluromys derbianus pallidus, inzwischen aber als Synonym gewertet (Voss, 2022); Caluromys laniger pyrrhus Thomas, 1901 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1899.9.6.50 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt im Juni 1898 von J. H. Batty und Parish vom Rio Oscuro nahe Cali (ca. 1.000 m Höhe), Cauca-Schlucht, Kolumbien. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005)); Didelphys laniger derbyanus Trouessart, 1905 (Schreibfehler); Philander laniger aztecus Thomas, 1913 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1894.12.18.28 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt bei San Juan de la Punta, Veracruz, Mexiko; Taxonomie: Von Miller & Kellogg (1955) als Caluromys derbianus aztecus eingeordnet, aber inzwischen als Synonym gewertet (Voss, 2022); Philander laniger fervidus Thomas, 1913 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1906.10.22.1 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt von J. Rodriguez in Guatemala. Taxonomie: Von Miller & Kellogg (1955) als Caluromys derbianus fervidus gelistet, heute aber als Synonym betrachtet (Voss, 2022)); Philander laniger nauticus Thomas, 1913 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1903.3.1.124 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt von J. H. Batty auf der Gobernadora-Insel, Westküste Panamas. Taxonomie: Von Miller & Kellogg (1955) als Caluromys derbianus nauticus gelistet, heute aber als Synonym gewertet (Voss, 2022)); Philander laniger pictus Thomas, 1913 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1910.7.16.5 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 10. November 1909 von M. G. Palmer bei Apia, Rio Apia, Cauca-Hänge, Kolumbien. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005)); Philander laniger senex Thomas, 1913 (Holotypus:Terra typica: BMNH 1913.10.24.75 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 25. Juni 1913 von Gilbert Hammond bei Mindo, Ekuador. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005)); Philander centralis Hollister, 1914 (USNM 12218/A38522 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Weibchen, gesammelt am 19. November 1874 von W. M. Gabb bei Talamanca, Limon, Costa Rica. Taxonomie: Von Goodwin (1946) als Caluromys derbianus centralis eingeordnet, inzwischen als Synonym betrachtet (Voss, 2022)); Micoureus antioquiae Matschie, 1917 (ZMB 5538/26753 (Zoologisches Museum Berlin), juveniles Weibchen, gesammelt von Th. Grosskopf bei Caceres am Cauca, Provinz Antioquia, Kolumbien. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005); Micoureus canus Matschie, 1917 (ZMB 4103 (Zoologisches Museum Berlin), adultes Weibchen, durch Gerrard in London erhalten, ursprünglich aus Nicaragua. Taxonomie: Von Miller & Kellogg (1955) als Caluromys derbianus canus gelistet, später als Synonym gelistet (Gardner, 2005)); Micoureus pulcher Matschie, 1917 (ZMB 20467/8 (Zoologisches Museum Berlin), adultes Weibchen, gekauft von Rath, am 17. Februar aus dem Zoologischen Garten Berlin bekommen. Taxonomie: Synonym von derbianus (Gardner, 2005)). 

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 225-300 mm; Schwanzlänge 384-445 mm; Gewicht 245-370 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Belize; Costa Rica; Ekuador; Guatemala; Honduras; Kolumbien; Mexiko; Nicaragua; Panama).

·         Literatur: Allen & Barbour (1923); Astúa (2015, 2020, 2023); Bucher & Hoffmann (1980); Fonseca & Astúa (2015); Gardner (2005); Goldman (1920); Goodwin (1946); Hollister (1914); Matschie (1917); Miller & Kellogg (1955); Solari & Lew (2015); Thomas (1899, 1913); Trouessart (1905); Voss (2022); Voss, Fleck & Jansa (2019); Waterhouse (1841).

 

            Caluromys lanatus (Olfers, 1818) (Braunohr-Wollbeutelratte/Brown-eared Woolly Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MNCN M2630 (Nationalmuseum der Naturwissenschaften Madrid), juveniles Männchen, gesammelt, bei Caazapá, Caazapá-Department, Paraguay.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphys lanata beschrieben, wurde von Hershkovitz (1959) in die Gattung Caluromys überführt. Oft wurden mit lanatus, cicur, nattereri, ochropus, ornatus und vitalinus sechs Unterarten unterschieden (Astúa, 2015). Inzwischen hat sich die Zahl meist auf zwei reduziert hat (Astúa, 2020, 2023). Neben der Nominatform wird aktuell wie auch hier noch ochropus als Unterart geführt. Der Status ist aber noch unsicher, da es an entsprechenden genetischen Analysen fehlt. Das aus dem Latein stammende Artepitheton lanatus bedeutet „wollig“ und bezieht sich auf die Behaarung der Tiere.

·         Unterarten:
1. Caluromys lanatus lanatus (Olfers, 1818) (Südliche Braunohr-Wollbeutelratte),
2. Caluromys lanatus ochropus (Wagner, 1842) (Nördliche Braunohr-Wollbeutelratte). Holotypus/Terra typica: Typusexemplar möglicherweise im Naturhistorischen Museum Wien (NMW?), gesammelt bei Barra, Amazonas, Brasilien. Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Didelphys ochropus beschrieben, wurde die Form später als Unterart von lanatus eingeordnet (Tate, 1939). Das Unterartepitheton leitet sich von den griechischen Wörtern ὠχρός für „ockerfarben“ und πούς für „Fuß“ ab. Es bezieht sich auf die Fußfärbung der Tiere.

·         Synonyme: Didelphys lanata Illiger, 1815 (nur Name); Didelphis lanigera Desmarest, 1821 (MNCN-M2630 (Nationalmuseum der Naturwissenschaften Madrid), Jungtier, gesammelt bei Caazapá, Department Caazapá, Paraguay); Didelphys ornata Tschudi, 1844 (Holotypus/Terra typica: MHNN 94.1008D (Museum für Naturgeschichte Neuchâtal), gesammelt in der mittleren und tiefen Waldregion, Peru); Philander cicur Bangs, 1898 (MCZ BANGS-8114 (Museum für vergleichende Zoologie Cambridge), adultes Weibchen, gesammelt am 27. März von W. W. Jr. Brown beim Pueblo Viejo (ca. 2.440 m Höhe), Gebirge Santa Marta, Kolumbien. Taxonomie: Gelegentlich als Unterart gelistet (Gardner, 2005), meist aber Synonym von lanatus ochropus (Voss, 2022)); Philander laniger jivaro Thomas, 1913 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1880.5.6.75 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt von Clarence Buckley bei Sarayacu am Fluss Pastasa, Ekuador. Taxonomie: Synonym von lanatus ochropus (Gardner, 2005)); Mallodelphis lanigera hemiura Miranda-Ribeiro, 1936 (Holotypus/Terra typica: MN 1229 (Nationalmuseum Rio de Janeiro), adultes Tiere, gesammelt in Brasilien. Taxonomie: Synonym von lanatus (Gardner, 2005)).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 201-319 mm; Schwanzlänge 330-446 mm; Gewicht 300-520 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Bolivien; Brasilien; Ekuador; Paraguay; Peru; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Bangs (1898); Costa et al. (2021); Desmarest (1821); Fonseca & Astúa (2015); Gardner (2005); Hershkovitz (1959); Illiger (1815); Miranda-Ribeiro (1936); Olfers (1818); Tate (1939); Tschudi (1844, 1845); Voss (2022); Voss, Fleck & Jansa (2019); Wagner (1842).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Caluromyinae > Caluromysiops

 

 

Caluromysiops

 

Caluromysiops irrupta

 

 

            Genus Caluromysiops Sanborn, 1951 (Gattung Binden-Wollbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Caluromysiops irrupta Sanborn, 1951.

·         Literatur: Sanborn (1951).

 

            Caluromysiops irrupta Sanborn, 1951 (Schwarzschulterbeutelratte/Black-shouldered Opossum):

·         Alternative Bezeichnung: Schwarzschulter-Wollbeutelratte).

·         Holotypus/Terra typica: FMNH 68336 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), juveniles Männchen, gesammelt am 11. Juli 1950 von Celestino Kalinowski bei Quincemil (ca. 680 m Höhe), Cusco-Department, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie:

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 250-330 mm; Schwanzlänge 310-340 mm; Hinterfußlänge ca. 39 mm; Ohrlänge ca. 31 mm; Gewicht 300-500 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Kolumbien; Peru, möglicherweise auch Bolivien).

·         Literatur: Sanborn (1951); Solari & Cáceres (2015).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Glironiinae > Glironia

 

 

Glironiinae

 

Glironia

 

Glironia venusta

 

 

 

Subfamilia Glironiinae Voss & Jansa, 2009 (Unterfamilie Buschschwanzbeutelratten):

·         1 Art

 

            Genus Glironia Thomas, 1912 (Gattung Eigentliche Buschschwanzbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Glironia venusta Thomas, 1912.

·         Literatur: Thomas (1912).

 

            Glironia venusta Thomas, 1912 (Buschschwanzbeutelratte/Bushy-tailed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1912.1.15.7 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt im April 1908 von L. Egg bei Pozuzo, Department Pasco, Peru.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 170-210 mm; Schwanzlänge 195-225 mm; Hinterfußlänge ca. 27 mm; Ohrlänge ca. 25 mm; Gewicht 130 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Bolivien; Brasilien; Kolumbien; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Solari & Martin (2016); Thomas (1912).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae

 

 

 

 

 

 

 

Marmosini

Didelphinae

 

 

 

 

 

Thylamyini

 

 

 

 

 

Didelphini

 

 

 

 

 

 

 

Metachirini

 

 

 

 

 

 

Subfamilia Didelphinae Rafinesque, 1815 (Unterfamilie Echte Beutelratten):

·         128 Arten in 14 Gattungen, davon eine Art ausgestorben und eine Art unbeschrieben.

·         Literatur: Rafinesque (1815).

 

Tribus Marmosini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Zwergbeutelratten):

·         57 Arten in drei Gattungen.

 

Tribus Thylamyini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Schmalbeutelratten):

·         45 Arten in sechs Gattungen, davon eine Art ausgestorben.

 

Tribus Didelphini Rafinesque, 1815 (Gattungsgruppe Opossums):

·         19 Arten in vier Gattungen.

·         Literatur: Rafinesque (1815).

 

Tribus Metachirini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Nacktschwanzbeutelratten):

·         7 Arten in einer Gattung, davon eine Art unbeschrieben.

·         Literatur: Hershkovitz (1992).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Marmosini

 

 

 

 

 

 

Monodelphis

Marmosini

 

 

 

 

 

Marmosa

 

 

 

 

 

Tlacuatzin

 

 

 

 

 

Tribus Marmosini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Zwergbeutelratten/Murine Opossums):

·         57 Arten in drei Gattungen.

 

            Genus Monodelphis Burnett, 1830 (Gattung Spitzmausbeutelratten):

·         24 Arten.

 

            Genus Marmosa J. E. Gray, 1821 (Gattung Eigentliche Zwergbeutelratten/Mouse Opossums):

·         28 Arten in fünf Untergattungen.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa murina (Linnaeus, 1758); eigentlich Didelphis marina É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1803, doch handelt es sich um einen Schreibfehler von murina. Der Stammbaum orientiert sich an den Analysen von das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024) und Voss et al. (2014). Der Gattungsname leitet sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ab und bezieht sich auf die Kletterfähigkeit der in der Gattung enthaltenen Arten.

·         Literatur: das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Geoffroy Saint-Hilaire (1803); Gray (1821); Linnaeus (1758); Voss et al. (2014).

 

            Genus Tlacuatzin Voss & Jansa, 2003 (Gattung Graue Zwergbeutelratten):

·         5 Arten.

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Monodelphis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis emiliae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis kunsi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis scalops

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis theresa

Monodelphis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis adusta

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis reigi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis peruviana

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis ronaldi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis handleyi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis osgoodi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis dimidiata

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis sorex

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis americana

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis gardneri

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis iheringi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis rubida

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis umbristriata

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis unistriata

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis arlindoi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis brevicaudata

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis palliolata

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis touan

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis domestica

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis glirina

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis maraxina

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Monodelphis santaerosae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Monodelphis Burnett, 1830 (Gattung Spitzmausbeutelratten):

·         24 Arten.

 

            Subgenus Pyrodelphys Pavan & Voss, 2016 (Untergattung Amazonas-Spitzmausbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Monodelphis emiliae (Thomas, 1912). Nach den Analysen von Pavan, Jansa & Voss (2014, 2016) nimmt die Untergattung Pyrodelphys eine basale Stellung innerhalb der Gattung Monodelphis ein und steht allen anderen Untergattungen gegenüber. Den Untersuchungen von Giarla et al. (2025) hingegen folgend, bildet Pyrodelphys zusammen mit den Untergattungen Monodelphiops und Microdelphys einen Ast, der einem Zweig aus den Untergattungen Mygalodelphys und Monodelphis gegenübersteht.

·         Literatur: Giarla et al. (2025); Pavan, Jansa & Voss (2014, 2016); Pavan & Voss (2016); Thomas (1912).

 

            Monodelphis emiliae (Thomas, 1912) (Emilie-Spitzmausbeutelratte/Emilie’s Short-tailed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1911.12.22.16 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 13. September 1911 von Emilie Snethlage bei Boim, Rio Tapajós im Bundesstaat Pará, Brasilien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Peramys emiliae beschrieben, überführten Corbet & Hill (1991) die Art in die Gattung Monodelphis. Pavan & Voss (2016) stellten die Art in eine eigene Untergattung Pyrodelphys, die nach Analysen von Giarla et al. (2025) dem Untergattungenpaar Microdelphys und Monodelphiops gegenübersteht. Die Art gilt als monotypisch und ist nach der deutsch-brasilianischen Ornithologin Henriette Mathilde Maria Elisabeth Emilie Snethlage benannt, die auch das Typusexemplar sammelte.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 97-158 mm; Schwanzlänge 45-70 mm; Gewicht 20-60 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Biologie/Ökologie: Die Art bewohnt Tieflandregenwälder außerhalb der Überschwemmungsbereiche vom Meeresspiegel bis in 300 m Höhe. Sie ist vorwiegend dämmerungsaktiv bis nachtaktiv und scheint sich hauptsächlich im Bereich umgestürzter Bäume aufzuhalten. Weibchen mit Nachwuchs wurden im Februar und September beobachtet.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Brasilien; Peru).

·         Literatur: Corbet & Hill (1991); Giarla et al. (2025); Patton & Percequillo (2015); Pavan & Voss (2016); Thomas (1912).

 

            Monodelphis adusta (Thomas, 1897) (Braune Spitzmausbeutelratte/Sepia Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 84-114 mm; Schwanzlänge 50-67 mm; Gewicht 15-35 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Panama; Kolumbien; Venezuela; Ecuador; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Solari & Tarifa (2015).

 

            Monodelphis reigi Lew & Pérez-Hernández, 2004 (Reig-Spitzmausbeutelratte/Reig’s Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 121 mm; Schwanzlänge ca. 74 mm; Gewicht subadulter Exemplare ca. 19 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Venezuela; Guyana).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Pérez-Hernández, Ventura & López Fuster (2016).

 

            Monodelphis handleyi Solari, 2007 (Handley- Spitzmausbeutelratte/Handley’s Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 123-124 mm; Schwanzlänge 68-69 mm; Gewicht 45,5-65 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Daten defizitär; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Solari (2016).

 

            Monodelphis osgoodi Doutt, 1938 (Osgood-Spitzmausbeutelratte/Osgood’s Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 60-62 mm; Schwanzlänge 94-96 mm; Gewicht 18-29 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru; Bolivien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Solari & Tarifa (2015).

 

            Monodelphis peruviana Osgood, 1913 (Peruanische Spitzmausbeutelratte/Peruvian Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 96 mm; Schwanzlänge ♂ ca. 56 mm, ♀ ca. 58 mm; Gewicht 24-30 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet).

·         Verbreitung: Südamerika (Peru; Bolivien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis kunsi Pine, 1975 (Zwerg-Spitzmausbeutelratte/Pygmy Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 62-102 mm; Schwanzlänge 36-45 mm; Gewicht 75-30 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Brasilien; Argentinien; Paraguay).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis brevicaudata (Erxleben, 1777) (Guiana-Spitzmausbeutelratte/Guyanan Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 143-170 mm, ♀ 128-161 mm; Schwanzlänge ♂ 64-97 mm, ♀ 71-87 mm; Gewicht ♂ 70-127 g, ♀ 50-81 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Venezuela; Guyana; Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis touan Shaw, 1800 (Touan-Spitzmausbeutelratte/Touan Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 138-170 mm, ♀ 119-155 mm; Schwanzlänge ♂ 79-95 mm, ♀ 65-85 mm; Gewicht ♂ 64-100 g, ♀ 40-66 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet).

·         Verbreitung: Südamerika (Französisch-Guyana; Brasilien; möglicherweise Surinam).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis arlindoi Pavan, Rossi & Schneider, 2012 (Arlindo-Spitzmausbeutelratte/Arlindo’s Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 120-182 mm, ♀ 95-150 mm; Schwanzlänge ♂ 70-98 mm, ♀ 65-90 mm; Gewicht ♂ 38-105 g, ♀ 33-96 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet).

·         Verbreitung: Südamerika (Guyana; Brasilien; möglicherweise Surinam).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis glirina Wagner, 1842 (Amazonas-Spitzmausbeutelratte/Amazonian Red-sided Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 120-180 mm, ♀ 110-165 mm; Schwanzlänge ♂ 65-106 mm, ♀ 65-90 mm; Gewicht ♂ 44-150 g, ♀ 40-85 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru; Bolivien; Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis palliolata Osgood, 1914 (Kronen-Spitzmausbeutelratte/Hooded Red-sided Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 123-183 mm, ♀ 102-141 mm; Schwanzlänge ♂ 70-105 mm, ♀ 55-88 mm; Gewicht ♂ 49-106 g, ♀ 32-63 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Kolumbien; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis domestica (Wagner, 1842) (Graue Spitzmausbeutelratte/Grey Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 123-179 mm; Schwanzlänge 46-96 mm; Gewicht 58-110 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Argentinien; Paraguay; Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis santaerosae Voss, Pine & Solari, 2012 (Santa-Rosa-Spitzmausbeutelratte/Santa Rosa Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 108 mm; Schwanzlänge ca. 60 mm; Gewicht ca. 23 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet).

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis scalops (Thomas, 1888) (Rotkopf-Spitzmausbeutelratte/Tawny-headed Short-tailed Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 63-163 mm; Schwanzlänge 37-83 mm; Gewicht 23-90 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Argentinien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis americana (P. L. S. Müller, 1776) (Dreistreifen-Spitzmausbeutelratte/Northern Three-striped Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: Kein Typusexemplar vorhanden. Recife, Pernambuco, Brasilien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Sorex americanus beschrieben, überführten Flower & Lydekker (1891) die Art zunächst in die Gattung Didelphys. Vieira (1950) ordnete sie schließlich in die Gattung Monodelphis ein und Corbet & Hill (1980) korrigierten das Artepitheton noch von americanus zu americana. Der Artname bezieht sich auf den Kontinent Amerika, auf dem das Verbreitungsgebiet liegt. Zeitweise galten die Taxa Monodelphis umbristriata (Miranda-Ribeiro, 1936) und Monodelphis rubida (Thomas, 1899) als eigenständige Arten (Corbet & Hill, 1980; Gardner, 1993), werden aber aufgrund genetischer Analysen aktuell als Synonyme von americana betrachtet (Pavan, Jansa & Voss, 2014; Pavan & Voss, 2016).

·         Synonyme: Mus araneus Marcgravus, 1648 (vor 1758); Sorex brasiliensis Erxleben, 1777 (Terra typica: Recife, Pernambuco, Brasilien); Didelphys tristriata Illiger, 1815 (Holotypus/Terra typica: ZMB 2333 (Zoologisches Museum Berlin), Recife, Pernambuco, Brasilien); Sorex brasilensis Muirhead, 1819 (Schreibfehler von brasiliensis); Didelphis trilineata Lund, 1839 (nur Name; Terra typica: Pernambuco, Brasilien); Peramys rubidus Thomas, 1899 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1855.11.26.9 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt in Bahia, Brasilien); Minuania americanos Miranda-Ribeiro, 1936 (Schreibfehler); Minuania umbristriata Miranda-Ribeiro, 1936 (Lectotypus MN 1314 (Nationalmuseum Rio de Janeiro), juveniles Männchen, gesammelt nahe Veadeiros im Bundesstaat Goiás, Brasilien).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 90-137 mm; Schwanzlänge 40-60 mm; Gewicht 23-46 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Astúa et al. (2021); Corbet & Hill (1980); Erxleben (1777); Flower & Lydekker (1891); Illiger (1815); Lund (1839, 1840); Marcgravus (1648); Miranda-Ribeiro (1936); Müller (1776); Muirhead (1819); Pavan, Jansa & Voss (2014); Pavan & Voss (2016); Thomas (1899); Vieira (1950).

 

            Monodelphis gardneri Solari, Pacheco, Vivar & Emmons, 2012 (Gardner-Spitzmausbeutelratte/Gardner’s Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 76-100 mm; Schwanzlänge 39-53 mm; Gewicht subadultes Tier ca. 10,3 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet).

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis iheringi (Thomas, 1888) (Ihering-Spitzmausbeutelratte/Ihering’s Three-striped Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 75-100 mm; Schwanzlänge 53-60 mm; Gewicht 15-23 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Daten defizitär.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis dimidiata (Wagner, 1847) (Orangeflanken-Spitzmausbeutelratte/Orange-sided Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 95-154 mm, ♀ 88-130 mm; Schwanzlänge ♂ 37-76 mm, ♀ 38-57 mm; Gewicht 40-84 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 18 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Paraguay; Argentinien; Uruguay).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis unistriata (Wagner, 1842) (Einstreifen-Spitzmausbeutelratte/Single-striped Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 141 mm; Schwanzlänge ca. 62 mm. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: vom Aussterben bedroht.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Argentinien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis ronaldi Solari, 2004 (Pine-Spitzmausbeutelratte/Pine’s Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis theresa Thomas, 1921 (Südliche Dreistreifen-Spitzmausbeutelratte/Southern Three-striped Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär.

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis sorex (Hensel, 1872) (Rotflanken-Spitzmausbeutelratte/Southern Red-sided Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis rubida (Thomas, 1899) (Kastanienstreifen-Spitzmausbeutelratte/Chestnut-striped Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär.

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis umbristriata Miranda-Ribeiro, 1936 (Rote Dreistreifen-Spitzmausbeutelratte/Red Three-striped Opossum):

·         Bestand: gefährdet.

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Monodelphis maraxina Thomas, 1923 (Marajó-Kurzschwanz-Spitzmausbeutelratte/Marajó Short-tailed Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär.

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Marmosa

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa rubra

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa simonsi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa robinsoni

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa xerophila

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa isthmica

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa mexicana

Marmosa

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa zeledoni

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa andersoni

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa chachapoya

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa lepida

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa tyleriana

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa waterhousei

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa macrotarsus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa murina

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa rapposa

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa parda

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa rutteri

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa paraguayana

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa meridae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa constantiae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa phaea

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa demerarae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa limae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa jansae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa perplexa

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa germana

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa nicaraguae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa adleri

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosa alstoni

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Marmosa J. E. Gray, 1821 (Gattung Eigentliche Zwergbeutelratten/Mouse Opossums):

·         28 Arten in fünf Untergattungen.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa murina (Linnaeus, 1758); eigentlich Didelphis marina É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1803, doch handelt es sich um einen Schreibfehler von murina. Der Stammbaum orientiert sich an den Analysen von Pavan et al. (2025), das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024) und Voss et al. (2014). Der Gattungsname leitet sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ab und bezieht sich auf die Kletterfähigkeit der in der Gattung enthaltenen Arten.

·         Literatur: das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Geoffroy Saint-Hilaire (1803); Gray (1821); Linnaeus (1758); Pavan et al. (2025); Voss et al. (2014).

 

            Subgenus Eomarmosa Voss, Gutiérrez, Soalri, Rossi & Jansa, 2014 (Untergattung Rote Zwergbeutelratten/Red Mouse Opossums):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa rubra Tate, 1931. Der Untergattungsname setzt sich aus zwei Teilen zusammen. Der erste leitet sich vom griechischen Wort ἕως für „Morgenröte“ ab und bezieht sich auf das rötliche Fell, während der zweite Teil sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ableitet und sich auf die Kletterfähigkeit bezieht.

·         Literatur: Tate (1931); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa rubra Tate, 1931 (Rote Zwergbeutelratte/Red Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: AMNH M-71973 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Weibchen, gesammelt am 7. Dezember 1925 von Olalla von der Mündung des Flusses Curaray, Loreto, Peru.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 128-200 mm, ♀ 130-156 mm; Schwanzlänge ♂ 183-214 mm, ♀ 191-217 mm; Gewicht 59-81 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Daten defizitär; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Kolumbien; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Solari (2015); Tate (1931).

 

            Subgenus Exulomarmosa Voss, Gutiérrez, Soalri, Rossi & Jansa, 2014 (Untergattung Nördliche Zwergbeutelratten/Northern Mouse Opossums):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa robinsoni Bangs, 1898. Der Untergattungsname setzt sich aus zwei Teilen zusammen. Der erste leitet sich vom lateinischen Wort exulo für „im Exil sein“ ab und bezieht sich auf den Vorkommensschwerpunkt nördlich der Anden, während der zweite Teil sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ableitet und sich auf die Kletterfähigkeit bezieht.

·         Literatur: Bangs (1898); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa simonsi Thomas, 1899 (Simons-Zwergbeutelratte/Simons’ Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1899.8.1.20 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 3. November 1898 von Perry Oveitt Simons auf der Insel Puná, Guayas, Ekuador.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zeitweise wurde die Form in die Gattung Didelphys gestellt (Trouessart, 1905) oder als Unterart von Marmosa robinsoni eingeordnet (O’Connell, 1983; Gardner, 2005). Molekularbiologische Untersuchungen bestätigen aber den Artstatus und weisen simsoni eine basale Stellung innerhalb der Untergattung Exulomarmosa zu (Voss et al., 2014). Die Art gilt als monotypisch und ist nach dem amerikanischen wissenschaftlichen Sammler Perry Oveitt Simons benannt, der auch das Typusexemplar fand.

·         Synonym: Marmosa robinsoni simsonsi O’Connell, 1983 (Schreibfehler).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 107-156 mm, ♀ 98-145 mm; Schwanzlänge ♂ 140-189 mm, ♀ 121-170 mm; Hinterfußlänge 17-26 mm; Ohrlänge 16-30 mm; Gewicht 24-49 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von robinsoni geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Peru)

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Gardner (2005); O’Connell (1983); Rossi, Voss & Lunde (2010); Thomas (1899); Trouessart (1905); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa robinsoni Bangs, 1898 (Robinson-Zwergbeutelratte/Robinson’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MCZ BANGS-7749 (Museum für vergleichende Zoologie Cambridge), adultes Männchen, gesammelt am 12. Juli 1895 von W. Robinson auf der Margarita-Insel, Nueva Esparta, Venezuela.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Marmosa robinsoni ist das Schwestertaxon von xerophila und die Typusart der Untergattung Exulomarmosa (Voss et al., 2014). Zeitweise wurde die Art in die Gattung Didelphys gestellt (Trouessart, 1905) oder als Unterart Marmosa mitis robinsoni gelistet (Tate, 1933). Manche Autoren listeten für robinsoni die acht Unterarten chapmani, fulviventer, grenadae, isthmica, luridavolta, robinsoni, ruatanica, simonsi (Gardner, 2005) oder mit mimetra sogar neun (O’Connell, 1983). Die Taxa isthmica und simsoni wurden inzwischen aufgrund genetischer Daten aber als separate Arten anerkannt (Voss et al., 2014), während die anderen Formen als Synonyme betrachtet werden und robinsoni nun als monotypisch gilt. Die Art ist nach dem US-amerikanischen Offizier und Naturforscher Wirt Robinson benannt, der auch das Typusexemplar sammelte.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 111-218 mm, ♀ 83-155 mm; Schwanzlänge ♂ 145-215 mm, ♀ 101-195 mm; Hinterfußlänge 20-25 mm; Ohrlänge 22-32 mm; Gewicht ♂ 39-110 g, ♀ 16-72 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Grenada; Kolumbien; Panama; Trinidad und Tobago; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Bangs (1898); Gardner (2005); O’Connell (1983); Pérez-Hernández (2016); Tate (1933); Trouessart (1905); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa xerophila Handley & Gordon, 1979 (Trockenland-Zwergbeutelratte/Dryland Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 443819 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 28. Juni 1986 von F. P. Jr. Brown, Norman E. Peterson und John Orville Matson auf La Isla, nahe Cojoro, 37 km Nordnordost von Paraguaipoa, Department Guajira, Kolumbien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nach genetischen Untersuchungen stellt xerophila das Schwestertaxon zu robinsoni dar (Voss et al., 2014). Die Art gilt als monotypisch und das Artepitheton xerophila leitet sich von den griechischen Wörtern ξηρός für „trocken“ und φίλος für „liebend“ ab, was sich auf den bevorzugten Lebensraum der Spezies bezieht.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 105-159 mm, ♀ 101-133 mm; Schwanzlänge ♂ 144-181 mm, ♀ 130-167 mm; Hinterfußlänge 17-20 mm; Ohrlänge 24-28 mm; Gewicht ♂ 40-87 g, ♀ 29-57 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Gefährdet; Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Kolumbien; Venezuela)

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Handley & Gordon (1979); Pérez-Hernández, López Fuster & Ventura (2016); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa isthmica Goldman, 1912 (Panama-Zwergbeutelratte/Isthmian Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 170969 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 16. Februar 1911 von Edward Alphonso Goldman am Rio Indio, nahe Gatun, Kanalzone, Panama.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Form isthmica wurde zunächst als Art beschrieben, aber zeitweise als Unterart von mexicana (Goldman, 1920), ruatanica (Tate, 1933), mitis (Miller & Kellogg, 1955) oder robinsoni (Handley, 1966) betrachtet. Genetische Analysen zeigten schließlich, dass es sich bei isthmica und regina um die gleiche Art handelt (Giarla & Voss, 2020). Eigentlich hätte der ältere Name regina Vorrang. Da jedoch in der Vergangenheit unterschiedlichste Entwicklungslinien unter dem Taxon regina vereint wurden, z.B. germanica, parda, phaea, rapposa und rutteri (Gardner, 1993), wodurch Komplikationen in der praktischen Arbeit zu erwarten sind, wurde ein Antrag bei der Internationalen Kommission für Zoologische Nomenklatur (ICZN) eingereicht, den Namen regina zu unterdrücken und isthmica als offizielle Bezeichnung für die Art zu verwenden (Voss & Giarla, 2020). Einstweilen wird hier isthmica als wissenschaftlicher Name für die Panama-Zwergbeutelratte verwendet. Die Art gilt als monotypisch. Das Artepitheton leitet sich von dem Isthmus (griechisch σθμός für „Landenge“) von Panama ab.

·         Synonyme: Marmosa regina Thomas, 1898 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1898.5.15.4 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 1. November 1895 von G. D. Child westlich Cundinamarca, Bogotá-Region, Kolumbien.)

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 115-200 mm, ♀ 105-182 mm; Schwanzlänge ♂ 160-253 mm, ♀ 150-229 mm; Gewicht ♂ 52-164 g, ♀ 40-93 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von robinsoni geführt; Populationsentwicklung unbekannt. Das Synonym regina wurde von der IUCN bewertet als Nicht gefährdet, Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Kolumbien; Panama).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Gardner (1993); Giarla & Voss (2020); Goldman (1912, 1920); Handley (1966); Miller & Kellogg (1955); Solari et al. (2021); Tate (1933); Thomas (1898); Voss & Giarla (2020).

 

            Marmosa mexicana Merriam, 1897 (Mexikanische Zwergbeutelratte/Mexican Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 71526 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 28. Februar 1895 von Edward Alphonso Goldman und Edward William Nelson bei Juquila (ca. 1.500 m Höhe), Oaxaca, Mexiko.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Unterart Marmosa murina mexicana beschrieben, erhob Bangs (1902) die Form in den Artstatus. Genetische Daten stützen den Status als eigene Art und ordnen mexicana als Schwesterart von zeledoni ein (Pavan et al., 2025). Das Artepitheton leitet sich von Mexiko ab, wo das Typusexemplar gefunden wurde.

·         Synonyme: Marmosa ruatanica Goldman, 1911 (Holotypus/Terra typica: USNM 7785/A37700 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Tier, gesammelt von J. Akhurst auf der Insel Ruatan, nördlich der Küste von Honduras. Taxonomie: Zeitweise als Unterart von mitis (Miller & Kellogg, 1955) oder robinsoni (Gardner, 2005) klassifiziert, gilt nun als Synonym von mexicana (Voss et al., 2014); Marmosa mayensis Osgood, 1913 (Holotypus/Terra typica: FMNH 19994 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), subadultes Tier, gesammelt im März 1913 von G. F. Gaumer bei Izamal, östlich von Mérida, Yucatán, Mexiko. Taxonomie: Die Form wurde zeitweise als Unterart von mexicana gelistet (Tate, 1933), stellt aber nach Gutiérrez, Jansa & Voss (2010) eine eigene Art dar oder nach Voss et al. (2014) lediglich ein Synonym von mexicana).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 110-168 mm, ♀ 94-133 mm; Schwanzlänge ♂ 152-228 mm, ♀ 130-223 mm; Hinterfußlänge 20-24 mm; Gewicht ♂ 24-99 g, ♀ 35,4-56,7 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Nordamerika (Belize; Costa Rica; El Salvador; Guatemala; Honduras; Mexiko; Nicaragua; Panama).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Bangs (1902); Gardner (2005); Goldman (1911); Gutiérrez, Jansa & Voss (2010); Martin (2016); Merriam (1897); Miller & Kellogg (1955); Osgood (1913); Pavan et al. (2025); Tate (1933); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa zeledoni Goldman, 1911 (Zeledon-Zwergbeutelratte/Zeledon’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 12885/A37133 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 1. März 1878 von José Castulo Zeledón bei Navarro, nahe Orosi, Provinz Cartago, Costa Rica.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Art wurde zeitweise als Unterart (Tate, 1933) oder Synonym (Gardner, 2005) von mexicana gelistet, stellt aber nach genetischen Daten eine eigene Art dar, die das Schwestertaxon von mexicana darstellt (Voss et al., 2014). Die Art gilt als monotypisch und ist nach dem costa-ricanischen Ornithologen José Castulo Zeledón benannt, der auch das Typusexemplar fand.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 120-162 mm, ♀ 119-145 mm; Schwanzlänge ♂ 145-210 mm, ♀ 149-197 mm; Gewicht 28-100 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Mittelamerika (Costa Rica; Kolumbien; Nicaragua; Panama).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Gardner (2005); Goldman (1911); Tate (1933); Voss et al. (2014).

 

            Subgenus Stegomarmosa Pine, 1972 (Untergattung Augenbrauen-Zwergbeutelratten/Heavy-browed Mouse Opossums):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa andersoni Pine, 1972. Der Untergattungsname setzt sich aus zwei Teilen zusammen. Der erste leitet sich vom griechischen Wort στέγος für „Dach“ ab und bezieht sich auf die stark ausgeprägten, dachartigen Überaugenwülste, während der zweite Teil sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ableitet und sich auf die Kletterfähigkeit bezieht.

·         Literatur: Pine (1972); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa andersoni Pine, 1972 (Anderson-Zwergbeutelratte/Anderson’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: FMNH 84252 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), subadultes Männchen, gesammelt am 21. September 1954 von Celestino Kalinowski an der Hacienda Villa Carmen (ca. 600 m Höhe), Cosñipata, Department Cuzco, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Marmosa andersoni bildet nach genetischen Untersuchungen die basalste Art innerhalb der Untergattung Stegomarmosa und steht dem Artenpaar chachapoya und lepida gegenüber (Pavan et al., 2025). Die Spezies ist nach dem Säugetierforscher und Mitarbeiter des Amerikanischen Museums für Naturgeschichte Sydney Anderson benannt und gilt als monotypisch.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 124-127 mm; Schwanzlänge 175-193 mm; Hinterfußlänge 20-22 mm; Ohrlänge 16,9-20 mm; Gewicht 28-38 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Daten defizitär; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Pavan et al. (2025); Pine (1972); Solari (2015); Solari & Pine (2008).

 

            Marmosa chachapoya Pavan, Abreu, Sánchez-Vendizú & Voss, 2025 (Chachapoya-Zwergbeutelratte/Chachapoya Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MUSM 48770 (Museum für Naturgeschichte der Nationaluniversität von San Marcos Lima), subadultes Männchen, gesammelt am 16. August 2018 von Silvia Eliza Pavan, Edson Fiedler de Abreu-Júnior und Pamela Y. Sánchez-Vendizú bei La Playa (ca. 2.664 m Höhe), archäologische Ausgrabungsstelle im oberen Basin des Río Montecristo, Nationalpark del Río Abiseo, Department San Marín, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nach genetischen Analysen gehört chachapoya zur Untergattung Stegomarmosa und ist die Schwesterart von lepida (Pavan et al., 2025). Die Art ist nach einer indigenen Kultur der östlichen Anden benannt. Die Chachapoya besiedelten die Nebelwälder Nordperus. Chachapoya stammt wahrscheinlich aus der Ketschua-Sprache und bedeutet „Nebelwald“.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 107 mm; Schwanzlänge ca. 160 mm; Hinterfußlänge ca. 20 mm; Ohrlänge ca. 18 mm; Gewicht ca. 21 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Pavan et al. (2025).

 

            Marmosa lepida (Thomas, 1888) (Fuchsrote Zwergbeutelratte/Rufous Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1869.3.31.4 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt von E. Bartlett bei Santa Cruz (ca. 150 m Höhe) am Río Huallaga, Loreto, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphys (Micoureus) lepida beschrieben, wurde die Art von Tate (1933) in die Gattung Marmosa überführt. Corbet & Hill (1991) ordneten lepida in die Gattung Thylamys ein. Die molekularbiologischen Daten stellen lepida als Schwestertaxon von chachapoya in die Untergattung Stegomarmosa (Pavan et al., 2025). Das aus dem Latein stammende Artepitheton lepida bedeutet „hübsch“ und bezieht sich auf das liebliche Aussehen der Tiere.

·         Synonyme: Marmosa lepida grandis Tate, 1931 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1926.12.4.94 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 25. Januar 1926 von José Steinbach bei Buenavista, Santa Cruz, Bolivien. Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Das Taxon grandis wird als Synonym von lepida betrachtet (Gardner, 2005), könnte aber auch eine separate Art darstellen (Voss, Fleck & Jansa, 2019). Das aus dem Latein stammende Epitheton grandis bedeutet „groß“ und bezieht sich auf die größeren Maße im Verhältnis zur Nominatform. Identifizierung/Beschreibung Kopf-Rumpf-Länge 120 mm; Schwanzlänge 145 mm; Hinterfußlänge 19 mm).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 96-120 mm; Schwanzlänge 140-160 mm; Hinterfußlänge 17-19 mm; Ohrlänge 17-20 mm; Gewicht 10-22 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Brasilien; Ekuador; Französisch-Guayana; Guyana; Kolumbien; Peru; Suriname; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Cáceres, Solari & Tarifa (2016); Corbet & Hill (1991); Gardner (2005); Pavan et al. (2025); Tate (1931, 1933); Thomas (1888); Voss, Fleck & Jansa (2019).

 

            Subgenus Marmosa J. E. Gray, 1821 (Untergattung Maus-Zwergbeutelratten/True Mouse Opossums):

·         4 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Marmosa murina (Linnaeus, 1758); eigentlich Didelphis marina É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1803, doch handelt es sich um einen Schreibfehler von murina. Der Stammbaum orientiert sich an den Analysen von Pavan et al. (2025), das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024) und Voss et al. (2014). Der Gattungsname leitet sich vom französischen Wort marmouset für „kleine Affen“ ab und bezieht sich auf die Kletterfähigkeit der in der Gattung enthaltenen Arten.

·         Literatur: das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Geoffroy Saint-Hilaire (1803); Gray (1821); Linnaeus (1758); Pavan et al. (2025); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa tyleriana Tate, 1931 (Tepui-Zwergbeutelratte/Tyler’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: AMNH M-76983 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Weibchen, gesammelt am 6. Februar 1929 von Olalla gesammelt am Zentrallager Berg Duida Plateau (ca. 1.400 m Höhe), oberer Orinoko, Amazonas, Venezuela.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Art tyleriana stellt nach genetischen Untersuchungen die basale Art innerhalb der Untergattung Marmosa dar und steht den Arten waterhousei, macrotarsus und murina gegenüber (Pavan et al., 2025). Die Art gilt als monotypisch und ist nach dem amerikanischen Historiker und Fotografen Sidney F. Tyler Junior benannt, der auch die Expedition finanzierte, bei der das Typusexemplar gefunden wurde.

·         Synonyme: Marmosa tyleriana phelpsi Tate, 1939 (AMNH M-130502 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Männchen, gesammelt am 6. Januar 1938 von George Henry Hamilton Tate am Auyantepui-Plateau (ca. 1.850 m Höhe), Venezuela. Taxonomie: Als Unterart von tyleriana beschrieben, gilt die Form inzwischen als Synonym (Gardner, 2005)).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 112-128 mm; Schwanzlänge 145-177 mm; Hinterfußlänge 19-20 mm; Ohrlänge ca. 19 mm; Gewicht 30-56 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Daten defizitär; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Gardner (2005); Pavan et al. (2025); Pérez-Hernández, López Fuster & Ventura (2016); Tate (1931, 1939).

 

            Marmosa waterhousei Tomes, 1860 (Waterhouse-Zwergbeutelratte/Waterhouse’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Lectotypus/Terra typica: Zunächst kein Typusexemplar festgelegt, Bestimmung eines Lectotypus durch Thomas (1921). BMNH 1907.1.1.215 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt im Dezember 1857 von Louis Fraser bei Gualaquiza (ca. 914 m Höhe), Morona-Santiago, Ekuador.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Art wurde ursprünglich als Didelphys waterhousii beschrieben. Murray (1866) korrigierte das Epitheton in waterhousei und Osgood (1914) überführte sie in die Gattung Marmosa. Zeitweise wurde die Art als Unterart (Tate, 1933) oder Synonym (Gardner, 2005; Creighton & Gardner, 2007) von murina geführt. Molekularbiologische Daten (Voss et al.; 2014) stützen aber den Status als eigene Art und sehen sie als Schwestertaxon zum Artenpaar macrotarsus und murina. Die Art gilt als monotypisch und ist nach dem britischen Zoologen George Robert Waterhouse benannt.

·         Synonyme: Marmosa bombascarae Anthony, 1922 (Holotypus/Terra typica: AMNH M-47186 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Weibchen, gesammelt am 24. November 1920 von Harold Elmer Anthony bei Zamora, Zamora-Chinchipe, Provinz von Loja, Ekuador. Taxonomie: Als Art beschrieben, gilt die Form aktuell als Synonym von waterhousei (Gardner, 2005)); Marmosa maranii Thomas, 1924 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1924.2.22.65 (Britisches Museum für Naturgeschichte London, adultes Männchen, gesammelt von Latham Rutter bei San Lorenzo, nördliches Ufer des Rio Maranon, knapp oberhalb der Verbindung zum Rio Huallaga, Loreto-Department, Peru. Taxonomie: Die Form wurde von Tate (1933) als Unterart von murina eingeordnet, gilt heute aber als Synonym von waterhousei (Gardner, 2005)).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 122-149 mm; Schwanzlänge 172-223 mm; Hinterfußlänge ca. 21 mm; Ohrlänge ca. 25 mm; Gewicht 49-66 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von murina geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Kolumbien; Peru; Venezuela).

·         Literatur: Anthony (1922); Astúa (2015, 2020, 2023); Creighton & Gardner (2007); Gardner (2005); Murray (1866); Osgood (1914); Tate (1933); Thomas (1921, 1924); Tomes (1860); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa macrotarsus (Wagner, 1842) (Großfuß-Zwergbeutelratte/Western American Mouse Opossum):

·         Holotypus/Syntypen/Terra typica: In der Erstbeschreibung wurden zwei Exemplare erwähnt, von denen zunächst keines zum Typusexemplar bestimmt wurde. Pelzeln (1883) listete aber nur ein Exemplar, welches von Tate (1933) als Syntypus eingeordnet wurde. NMW B-2610 (Naturhistorisches Museum Wien), adultes Männchen, gesammelt von Johann Natterer am Rio Madeira

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphys macrotarsus beschrieben, wurde die Form von Tate (1933) als Unterart von Marmosa murina eingeordnet, wobei dieser den von Cabrera (1913) eingeführten Ersatznamen madeirensis verwendete, da nach dessen Ansicht macrotarsus bereits durch Didelphys macrotarsos Schreber, 1777 besetzt sei, einem Synonym für den Sulawesi-Koboldmaki (Tarsius tarsier). Aufgrund der leicht anderen Schreibweise, ist Marmosa macrotarsus aber weiterhin gültig und madeirensis ein Synonym (Voss, 2022). In der Literatur wird macrotarsus teils auch selbst als Synonym von murina eingestuft (Gardner, 2005). Morphologische (Rossi, 2005) und genetische Daten (Gutiérrez, Jansa & Voss, 2010) unterstützen aber den Status als separate Spezies. Das Artepitheton macrotarsus leitet sich von den griechischen Wörtern μακρός für „groß“ und ταρσός für „Fuß“ ab und bezieht sich auf die verhältnismäßig großen Füße der Tiere.

·         Synonym: Didelphys macrotarsis Murray, 1866 (Schreibfehler); Marmosa quichua Thomas, 1899 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1898.11.6.18 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 2. Oktober 1897 von Otto Garlepp im Ocobamba-Tal, Cuzco, Peru. Taxonomie: Die Form wurde von Trouessart (1905) in die Gattung Didelphys gestellt, meist aber als Art in Marmosa betrachtet (Corbet & Hill, 1991; Gardner, 2005). Rossi (2005) identifizierte quichua schließlich als Synonym von macrotarus); Marmosa musicola Osgood, 1913; Marmosa madeirensis Cabrera, 1913 (ungültiger Ersatzname).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 102-136 mm; Schwanzlänge 148-206 mm; Hinterfußlänge 17-20 mm; Ohrlänge ca. 19 mm; Gewicht 23-51 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von murina geführt; Populationsentwicklung unbekannt. Das Synonym quichua wurde von der IUCN bewertet als Nicht gefährdet, Population abnehmend.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru; Bolivien; Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Cabrera (1913); Corbet & Hill (1991); Gardner (2005); Gutiérrez, Jansa & Voss (2010); Murray (1866); Osgood (1913); Pelzeln (1883); Rossi (2005); Schreber (1777); Solari (2015); Tate (1933); Trouessart (1905); Voss (2022).

 

            Marmosa murina (Linnaeus, 1758) (Maus-Zwergbeutelratte/Linnaeus’ Mouse Opossum):

·         Holotypus/Lectotypus/Terra typica: Zunächst kein Typusexemlar festgelegt, Bestimmung eines Lectotypus durch Husson (1978). BMNH 1867.4.12.542 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt in Suriname.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphis murina beschrieben, wurde die Art zeitweise in die Gattungen Didelphys (Borowski, 1780), Philander (Tiedemann, 1808), Sarigua (Muirhead, 1819), Micoureus (Lesson, 1842) und Cuica (Liais, 1872) gestellt. Thomas (1896) ordnete die Art in die Gattung Marmosa ein, was sich schließlich durchgesetzt hat bzw. auch durch genetische Analysen bestätigt wird (Voss et al., 2014).

·         Synonyme: Didelphis marina É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1803 (Schreibfehler).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 91-240 mm; Schwanzlänge 139-280 mm; Gewicht 19-100 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Suriname; Trinidad und Tobago; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Borowski (1780); Brito et al. (2021); Geoffroy Saint-Hilaire (1803); Husson (1978); Lesson (1842); Liais (1872); Muirhead (1819); Thomas (1896); Tiedemann (1808); Voss et al. (2014).

 

            Marmosa rapposa Thomas, 1899 (Bolivianische Zwergbeutelratte/Bolivian Woolly Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1898.11.6.13 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt im Dezember 1897 von Otto Garlepp am Fluss Vilcanota (ca. 1.500 m Höhe), nördlich von Cuzco, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Art wurde zeitweise in die Gattungen Didelphys (Trouessart, 1905) oder Micoureus (Corbet & Hill, 1991) gestellt und lange auch als Unterart von regina betrachtet (Gardner, 2005; Astúa, 2015). Genetische Untersuchungen belegen aber den Status als eigenständige Art (Voss et al., 2020) und sehen rapposa als Schwestertaxon zum Artenpaar parda und rutteri. Das Artepitheton leitet sich von dem portugiesischen Wort raposa für „Fuchs“ ab, wird aber allgemein im Peruanisch-Spanischen als Bezeichnung für die Zwergbeutelratten verwendet, was wohl auf die oft rötliche, also fuchsähnliche Färbung zurückzuführen ist.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 131-186 mm, ♀ 118-170 mm; ♂ Schwanzlänge 180-239 mm, ♀ 162-237 mm; Hinterfußlänge ♂ 22-29 mm, ♀ 19-28 mm; Ohrlänge ♂ 23-30 mm, ♀ 20-30 mm; Gewicht ♂ 52-132 g, ♀ 37-98 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von regina geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Bolivien; Brasilien; Paraguay; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Corbet & Hill (1991); Thomas (1899); Trouessart (1905); Voss et al. (2020)

 

            Marmosa phaea Thomas, 1899 (Kleine Zwergbeutelratte/Little Woolly Mouse Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 121-170 mm; Schwanzlänge 153-236 mm; Gewicht ca. 63 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: gefährdet

·         Verbreitung: Südamerika (Kolumien; Ecuador; möglicherweise Peru).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Marmosa paraguayana Tate, 1931 (Südöstliche Zwergbeutelratte/South-eastern Woolly Mouse Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 120-200 mm; Schwanzlänge 150-260 mm; Gewicht 56-230 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Paraguay; Argentinien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Marmosa alstoni (J. A. Allen, 1900) (Alston-Zwergbeutelratte/Alston’s Woolly Mouse Opossum):

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 155-180 mm; Schwanzlänge 250-281 mm; Gewicht 60-150 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Mittelamerika (Belize; Honduras; Nicaragua; Costa Rica; Panama; Kolumbien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Marmosa demerarae Thomas, 1905 (Nordöstliche Zwergbeutelratte/Northeastern Woolly Mouse Opossum):

·         Unterarten: Langhaar-Zwergbeutelratte (M. demerarae demerarae), Roraima-Zwergbeutelratte (M. demerarae areniticola), Amazonien-Zwergbeutelratte (M. demerarae domina), Esmeralda-Zwergbeutelratte (M. demerarae esmeraldae), Merida-Zwergbeutelratte (M. demerarae meridae)

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 152-210 mm; Schwanzlänge 195-270 mm; Gewicht 62-130 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Peru; Kolumbien; Venezuela; Guyana; Surinam; Französisch-Guyana; Brasilien)

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

            Marmosa constantiae Thomas, 1904 (Weißbauch-Zwergbeutelratte/White-bellied Woolly Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1903.7.7.157 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), gesammelt bei Chapada, Mato Grosso, Brasilien.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 134-180 mm; Schwanzlänge 186-220 mm; Gewicht 68-90 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Brasilien; Peru)

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Tarifa & Martin (2016); Thomas (1904).

 

            Marmosa germana Thomas, 1904 (Nordwestliche Zwergbeutelratte/Northwestern Woolly Mouse Opossum):

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zeitweise wurde die Art auch in die Gattung Didelphys (Trouessart, 1905) oder als Unterart von Marmosa/Micoureus regina (Astúa, 2015; Gardner, 2005) eigeordnet. Morphologische und genetische Untersuchungen stützen aber den Status als separate Art und weisen sie als Schwestertaxon zum nicaraguae/adleri/alstoni-Komplex

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 186-205 mm, ♀ 154-187 mm; Schwanzlänge ♂ 254-282 mm, ♀ 225-270 mm; Hinterfußlänge ♂ 27-32 mm, ♀ 25-29 mm; Ohrlänge ♂ 24-28 mm, ♀ 24-26 mm; Gewicht ♂ 84-150 g, ♀ 75-95 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Kolumbien; Peru)

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Thomas (1904); Trouessart (1905).

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Tlacuatzin

 

 

Tlacuatzin

 

Tlacuatzin canescens

 

 

            Genus Tlacuatzin Voss & Jansa, 2003 (Gattung Graue Zwergbeutelratten):

·         1 Art

 

            Tlacuatzin canescens (Allen, 1893) (Graue Zwergbeutelratte/Greyish Mouse Opossum):

·         Unterarten: Gemeine Graue Zwergbeutelratte (T. canescens canescens), Islas-Marías-Zwergbeutelratte (T. canescens insularis), Oaxaca-Zwergbeutelratte (T. canescens oaxacae), Sinaloa-Zwergbeutelratte (T. canescens sinaloae)

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 110-160 mm; Schwanzlänge 105-167 mm; Gewicht 30-70 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: nicht gefährdet

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Thylamyini

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops

 

 

 

Thylamyini

 

 

 

 

 

Chacodelphys

 

 

 

 

 

Cryptonanus

 

 

 

 

 

 

 

 

Gracilinanus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Lestodelphys

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys

 

 

 

 

 

 

 

Tribus Thylamyini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Schmalbeutelratten):

·         45 Arten in sechs Gattungen, davon eine Art ausgestorben.

 

            Genus Marmosops Matschie, 1916 (Gattung Schlankbeutelratten):

·         21 Arten.

 

            Genus Chacodelphys Voss, Gardner & Jansa, 2004 (Gattung Chaco-Beutelratten):

·         1 Art.

 

            Genus Cryptonanus Voss, Lunde & Jansa, 2005 (Gattung Südliche Schmalbeutelratten):

·         5 Arten, davon eine ausgestorben.

 

            Genus Gracilinanus Gardner & Creighton, 1989 (Gattung Nördliche Schmalbeutelratten):

·         6 Arten.

 

            Genus Lestodelphys Tate, 1934 (Gattung Patagonische Beutelratten):

·         1 Art.

 

            Genus Thylamys Gray, 1843 (Gattung Fettschwanz-Beutelratten):

·         11 Arten.

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Marmosops

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops caucae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops invictus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops noctivagus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops creightoni

Marmosops

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops impavidus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops ocellatus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops neblina

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops paulensis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops cracens

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops incanus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops bishopi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops handleyi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops fuscatus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops juninensis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops parvidens

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Marmosops pinheiroi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Marmosops Matschie, 1916 (Gattung Schlankbeutelratten):

·         16 Arten

 

            Marmosops caucae Thomas, 1900 (Cauca-Schlankbeutelratte/Cauca Slender Opossum):

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet)

 

            Marmosops invictus (Goldman, 1912) (Panama-Schlankbeutelratte/Panama Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops noctivagus (Tschudi, 1845) (Weißbäuchige Schlankbeutelratte/White-bellied Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops creightoni Voss, Tarifa & Yensen, 2004 (Creighton-Schlankbeutelratte/Creighton’s Slender Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Marmosops ocellatus Tate, 1931 (Gefleckte Schlankbeutelratte/Spotted Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops impavidus (Tschudi, 1845) (Anden-Schlankbeutelratte/Tschudi’s Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops neblina Gardner, 1990 (Neblina-Schlankbeutelratte/Neblina Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops paulensis Tate, 1931 (Brasilianische Schlankbeutelratte/Brazilian Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops incanus (Lund, 1840) (Graue Schlankbeutelratte/Grey Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops cracens Handley & Gordon, 1979 (Schmalköpfige Schlankbeutelratte/Narrow-headed Slender Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Marmosops bishopi Pine, 1981 (Bishop-Schlankbeutelratte/Bishop’s Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops handleyi (Pine, 1981) (Handley-Schlankbeutelratte/Handley’s Slender Opossum):

·         Bestand: vom Aussterben bedroht

 

            Marmosops fuscatus (Thomas, 1896) (Graubäuchige Schlankbeutelratte/Dusky Slender Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Marmosops juninensis Tate, 1931 (Junin-Schlankbeutelratte/Junin Slender Opossum):

·         Bestand: gefährdet

 

            Marmosops parvidens Tate, 1931 (Kleinzähnige Schlankbeutelratte/Delicate Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Marmosops pinheiroi Pine, 1981 (Pinheiro-Schlankbeutelratte/Pinheiro’s Slender Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Chacodelphys

 

 

Chacodelphys

 

Chacodelphys formosa

 

 

            Genus Chacodelphys Voss, Gardner & Jansa, 2004 (Gattung Chaco-Beutelratten):

·         1 Art

 

            Chacodelphys formosa (Shamel, 1930) (Chaco-Beutelratte/Chacoan Pygmy Opossum):

·         Bestand: gefährdet

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Cryptonanus

 

 

            Genus Cryptonanus Voss, Lunde & Jansa, 2005 (Gattung Südliche Schmalbeutelratten):

·         5 Arten, davon eine ausgestorben

 

            Cryptonanus agricolai (Moojen, 1943) (Ceara-Schmalbeutelratte/Agricola’s Gracile Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Cryptonanus chacoensis (Waterhouse, 1839) (Chaco-Schmalbeutelratte/Chacoan Gracile Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Cryptonanus guahybae (Tate, 1931) (Guahyba-Schmalbeutelratte/Guahyba Gracile Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Cryptonanus ignitus (Diaz, Flores & Barquez, 2002) (Rotbäuchige Schmalbeutelratte/Red-bellied Gracile Opossum):

·         Bestand: ausgestorben (seit ca. 1962)

 

            Cryptonanus unduaviensis (Tate, 1931) (Unduavi-Schmalbeutelratte/Unduavi Gracile Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Gracilinanus

 

 

            Genus Gracilinanus Gardner & Creighton, 1989 (Gattung Nördliche Schmalbeutelratten):

·         8 Arten

 

            Gracilinanus aceramarcae (Tate, 1931) (Bolivianische Schmalbeutelratte/Aceramarca Gracile Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Gracilinanus agilis (Burmeister, 1854) (Flinke Schmalbeutelratte/Agile Gracile Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Gracilinanus dryas (Thomas, 1898) (Wald-Schmalbeutelratte/Wood Gracile Opossum):

·         Bestand: potenziell gefährdet (Vorwarnliste)

 

            Gracilinanus emiliae (Thomas, 1909) (Emilia-Schmalbeutelratte/Emilia’s Gracile Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Gracilinanus longicaudus Hershkovitz, 1993 (Langschwänzige Schmalbeutelratte/Long-tailed Gracile Opossum):

·         Eventuell Synonym von Gracilinanus emiliae

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet)

 

            Gracilinanus marica (Thomas, 1898) (Nördliche Schmalbeutelratte/Northern Gracile Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Gracilinanus microtarsus (Wagner, 1842) (Brasilianische Schmalbeutelratte/Brazilian Gracile Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Gracilinanus perijae Hershkovitz, 1992 (Kolumbische Schmalbeutelratte/Colombian Gracile Opossum):

·         Eventuell Synonym von Gracilinanus marica

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet)

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Lestodelyphs

 

 

            Genus Lestodelphys Tate, 1934 (Gattung Patagonische Beutelratten):

·         1 Art.

 

            Lestodelphys halli (Thomas, 1921) (Patagonische Beutelratte/Patagonian Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet.

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Thylamys

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys karimii

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys velutinus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys macrurus

Thylamys

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys sponsorius

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys cinderella

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys venustus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys pusillus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys citellus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys pulchellus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys Tatei

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys elegans

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys fenestrae

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Thylamys pallidor

 

 

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Thylamys Gray, 1843 (Gattung Fettschwanz-Beutelratten):

·         13 Arten

·         Der dargestellte Stammbaum kombiniert die Ergebnisse von Giarla et al. (2010), Teta et al. (2009) und Martin (2009)

 

            Thylamys karimii Petter, 1968 (Karimi-Fettschwanz-Beutelratte/Karimi’s Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: gefährdet

 

            Thylamys velutinus (Wagner, 1842) (Zwerg-Fettschwanz-Beutelratte/Dwarf Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys macrurus (Olfers, 1818) (Paraguay-Fettschwanz-Beutelratte/Paraguayan Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: potenziell gefährdet (Vorwarnliste)

 

            Thylamys sponsorius Thomas, 1921 (Argentinische Fettschwanz-Beutelratte/Argentine Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys cinderella Thomas, 1902 (Cinderella-Fettschwanz-Beutelratte/Cinderella Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys venustus Thomas, 1902 (Liebliche Fettschwanz-Beutelratte/Buff-bellied Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Thylamys pusillus (Desmarest, 1804) (Kleine Fettschwanz-Beutelratte/Small Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys citellus Thomas, 1912 (Ziesel-Fettschwanz-Beutelratte/Squirrel Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys pulchellus Cabrera, 1934 (Schöne Fettschwanz-Beutelratte/Beautiful Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys elegans (Waterhouse, 1839) (Elegante Fettschwanz-Beutelratte/Elegant Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys Tatei Handley, 1957 (Tate-Fettschwanz-Beutelratte/Tate’s Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: Daten defizitär

 

            Thylamys fenestrae Marelli, 1932 (Córdoba-Fettschwanz-Beutelratte/Córdoba Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Thylamys pallidior (Thomas, 1902) (Weißbauch-Fettschwanz-Beutelratte/White-bellied Fat-tailed Mouse Opossum):

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet)

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Didelphini

 

 

 

 

 

 

 

Chironectes

Didelphini

 

 

 

 

 

 

Lutreolina

 

 

 

 

 

 

Didelphis

 

 

 

 

 

Philander

 

 

 

 

 

 

Tribus Didelphini Rafinesque, 1815 (Gattungsgruppe Opossums):

·         19 Arten in vier Gattungen.

·         Literatur: Rafinesque (1815).

 

            Genus Chironectes Illiger, 1811 (Gattung Schwimmbeutelratten):

·         1 Art.

 

            Genus Lutreolina Thomas, 1910 (Gattung Dickschwanz-Beutelratten):

·         2 Arten.

 

            Genus Didelphis Linnaeus, 1758 (Gattung Eigentliche Opossums):

·         6 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758.

·         Literatur: Linnaeus (1758).

 

            Genus Philander Brisson, 1762 (Gattung Vieraugenbeutelratten):

·         10 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Philanderr opossum (Linnaeus, 1758). Der Stammbaum orientiert sich an den Analysen von das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) und Voss & Giarla (2020). Die Art quica vom atlantischen Küstenwald stellt dabei die basalste Form dar und steht allen anderen Arten der Gattung gegenüber. Danach spaltete sich eine im westlichen Südamerika verbreitete Entwicklungslinie ab, zu der andersoni und nigratus gehören. Danach spaltete sich die Gattung in zwei weitere Äste auf. Einer davon enthält die Arten mcilhennyi und opossum sowie möglicherweise auch deltae. Die Zuordnung von deltae erfolgt hier provisorisch aufgrund der geographischen Nähe zum Verbreitungsgebiet von opossum (nördliches Südamerika). Es wäre aber auch eine engere Verwandtschaft mit canus möglich. Genetische Daten liegen für Philander deltae noch nicht vor. Der zweite Ast enthält mit den Schwesterarten melanurus und vossi einen Entwicklungszweig, der sich nach Mittelamerika ausgebreitet hat. Das andere Artenpaar innerhalb des zweiten Astes bilden canus und pebas. Während das Verbreitungsgebiet von pebas sich entlang des Amazonas erstreckt, liegen die Vorkommen von canus relativ verstreut im tropischen Südamerika, das zentrale Amazonasgebiet aussparend.  

·         Synonyme: Metachirops Matschie, 1916; Holothylax Cabrera, 1919; Hylothylax Gardner, 2005 (Schreibfehler von Holothylax); Phillander Rivillas, Caro, Carvajal & Vélez, 2004 (Schreibfehler).

·         Literatur: Brisson (1762); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Gardner (2005); Linnaeus (1758); Matschie (1916); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Didelphini > Chironectes

 

 

Chironectes

 

Chironectes minimus

 

 

            Genus Chironectes Illiger, 1811 (Gattung Schwimmbeutelratten):

·         1 Art

 

            Chironectes minimus (Zimmermann, 1789) (Schwimmbeutler/Water Opossum):

·         Unterarten: Südamerikanischer Schwimmbeutler (C. minimus minimus), Mittelamerikanischer Schwimmbeutler (C. minimus argyrodytes), Panama-Schwimmbeutler (C. minimus panamensis), Paraguay-Schwimmbeutler (C. minimus paraguensis)

·         Bestand: nicht gefährdet

·         Verbreitung: Mittel- und Südamerika (Mexiko; Guatemala; El Salvador; Belize; Honduras; Nicaragua; Costa Rica; Panama; Kolumbien; Venezuela; Guyana; Französisch-Guyana; Surinam; Trinidad und Tobago; Brasilien; Uruguay; Argentinien; Paraguay; Bolivien; Peru; Ecuador)

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Didelphini > Lutreolina

 

 

 

 

 

Lutreolina crassicaudata

Lutreolina

 

 

 

 

Lutreolina massoia

 

 

 

 

            Genus Lutreolina Thomas, 1910 (Gattung Dickschwanzbeutelratten):

·         2 Arten

 

            Luterolina crassicaudata (Desmarest, 1804) (Dickschwanzbeutelratte/Common Lutrine Opossum):

·         Bestand: nicht gefährdet

 

            Luterolina massoia Martínez-Lanfranco, Flores, Jayat & d’Elía, 2014 (Massoia-Beutelratte/Massoia’s Lutrine Opossum):

·         Bestand: unbekannt (nicht bewertet)

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Didelphini > Didelphis

 

 

 

 

 

 

 

 

Didelphis virginiana

 

 

 

Didelphis

 

 

 

 

 

Didelphis albiventris

 

 

 

 

 

Didelphis aurita

 

 

 

 

 

 

 

 

Didelphis marsupialis

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Didelphis imperfecta

 

 

 

 

 

 

 

 

Didelphis pernigra

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Didelphis Linnaeus, 1758 (Gattung Opossums):

·         6 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758.

·         Literatur: Linnaeus (1758).

 

            Didelphis virginiana Kerr, 1792 (Nordopossum/Virginia Opossum):

·         Alternative Bezeichnung: Virginia-Opossum.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population zunehmend.

·         Verbreitung: Nordamerika: Belize; Costa Rica; El Salvador; Guatemala; Honduras; Kanada; Mexiko; Nicaragua; Vereinigte Staaten).

·         Literatur: Kerr (1792); Pérez-Hernández, Lew & Solari (2016).

 

            Didelphis albiventris Lund, 1840 (Brasilianisches Weißohropossum/Brazilian White-eared Opossum):

·         Alternative Bezeichnung: Südopossum.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Bolivien; Brasilien; Paraguay; Uruguay).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Costa et al. (2021); Lund (1840).

 

            Didelphis aurita Wied-Neuwied, 1826 (Großohropossum/Southern Black-eared Opossum):

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Brasilien; Paraguay).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Astúa, de la Sancha & Costa (2021); Wied-Neuwied (1826).

 

            Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758 (Schwarzohropossum/Northern Black-eared Opossum):

·         Holotypus/Neotypus/Terra typica: Verbleib des ursprünglichen Typusexemplars unklar; daher bestimmten Feijó & Voss (2019) einen Neotypus. ROM 113908 (Königliches Museum Ontario), adultes Weibchen, gesammelt am 11. April 2002 von M. D. Engstrom, B. K. Lim, S. L. Peters, F. M. Catzeflis und M. Djosetro im Brownsberg-Nationalpark (500 m Höhe), Brokopondo-Distrikt, Suriname.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika: (Argentinien; Belize, Bolivien; Brasilien; Costa Rica; Ekuador; El Salvador; Französisch-Guayana; Guatemala; Guyana; Honduras; Kolumbien; Mexiko; Nicaragua; Panama; Paraguay; Peru; Suriname; Trinidad und Tobago; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Astúa et al. (2021); Feijó & Voss (2019); Linnaeus (1758).

 

            Didelphis imperfecta Mondolfi & Pérez-Hernández, 1984 (Guyana-Weißohropossum/Guianan White-eared Opossum):

·         Alternative Bezeichnung: Guiana-Opossum.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Suriname; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Mondolfi & Pérez-Hernández (1984); Pérez-Hernández et al. (2016).

 

            Didelphis pernigra J. A. Allen, 1900 (Anden-Weißohropossum/Andean White-eared Opossum):

·         Alternative Bezeichnung: Andenopossum.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Bolivien; Ekuador; Kolumbien; Peru; Venezuela).

·         Literatur: Allen (1900); Pérez-Hernández et al. (2016).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Didelphini > Philander

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander quica

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander andersoni

Philander

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander nigratus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander mcilhennyi

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander deltae

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander opossum

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander canus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander pebas

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander melanurus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Philander vossi

 

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Philander Brisson, 1762 (Gattung Vieraugenbeutelratten):

·         10 Arten.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Philanderr opossum (Linnaeus, 1758). Der Stammbaum orientiert sich an den Analysen von das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) und Voss & Giarla (2020). Die Art quica vom atlantischen Küstenwald stellt dabei die basalste Form dar und steht allen anderen Arten der Gattung gegenüber. Danach spaltete sich eine im westlichen Südamerika verbreitete Entwicklungslinie ab, zu der andersoni und nigratus gehören. Danach spaltete sich die Gattung in zwei weitere Äste auf. Einer davon enthält die Arten mcilhennyi und opossum sowie möglicherweise auch deltae. Die Zuordnung von deltae erfolgt hier provisorisch aufgrund der geographischen Nähe zum Verbreitungsgebiet von opossum (nördliches Südamerika). Es wäre aber auch eine engere Verwandtschaft mit canus möglich. Genetische Daten liegen für Philander deltae noch nicht vor. Der zweite Ast enthält mit den Schwesterarten melanurus und vossi einen Entwicklungszweig, der sich nach Mittelamerika ausgebreitet hat. Das andere Artenpaar innerhalb des zweiten Astes bilden canus und pebas. Während das Verbreitungsgebiet von pebas sich entlang des Amazonas erstreckt, liegen die Vorkommen von canus relativ verstreut im tropischen Südamerika, das zentrale Amazonasgebiet aussparend.  

·         Synonyme: Metachirops Matschie, 1916; Holothylax Cabrera, 1919; Hylothylax Gardner, 2005 (Schreibfehler von Holothylax); Phillander Rivillas, Caro, Carvajal & Vélez, 2004 (Schreibfehler).

·         Literatur: Brisson (1762); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Gardner (2005); Linnaeus (1758); Matschie (1916); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020).

 

            Philander quica (Temminck, 1824) (Südöstliche Vieraugenbeutelratte/Southeastern Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Lectotypus/Terra typica: Ursprünglich wurde kein Typusexemplar festgelegt, Hershkovitz (1959) bestimmte einen Lectotypus, der aber verschollen ist, Weibchen, gesammelt am 3.März 1818 von Johann Baptist Natterer nahe Sepetiba, Rio de Janeiro, Brasilien. Ein Paralectotypus RMNH.MAM.12848 (subadultes Männchen) existiert im Naturalis Biodiversitätszentrum (ehemals Reichsmuseum für Naturgeschichte) Leiden.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als eigene Art Didelphis quica beschrieben, ordnete Vieira (1950) die Form als Unterart von opossum ein. Gardner (2005) betrachtete quica hingegen als Synonym von Philander frenatus. Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) synonymisierten frenatus schließlich mit opossum und erhoben quica wieder in den Artstatus. Nach genetischen Analysen stellt Philander quica die basalste Art innerhalb der Gattung Philander dar und steht allen anderen Arten gegenüber. Das Artepitheton leitet sich von dem Tupi-Wort cuica ab, was die Bezeichnung für Vieraugenbeutelratten in der Tupi-Sprache ist.

·         Synonyme: Didelphis larvata Jentink, 1888 (Holotypus/Terra typica: Adultes Weibchen, gesammelt von Johann Baptist Natterer in Brasilien); Metachirus opossum azaricus Thomas, 1923 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1903.2.3.36 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 8. August 1892 von W. Foster bei Sapucay, Paraguarí, Paraguay).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 265-327 mm; Schwanzlänge 170-326 mm; Hinterfußlänge 24-43 mm; Ohrlänge 10-39 mm; Gewicht 220-910 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt; die IUCN bewertete die Population des atlantischen Küstenwaldes unter dem Taxon Philander frenatus mit Nicht gefährdet.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Brasilien; Paraguay).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); de la Sancha, Brito & Costa (2016); Gardner (2005); Hershkovitz (1959); Jentink (1888); Temminck (1824); Thomas (1923); Vieira (1950); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018).

 

            Philander andersoni (Osgood, 1913) (Anderson-Vieraugenbeutelratte/Anderson’s Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: FMNH 19655 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), adultes Männchen, gesammelt am 11. September 1912 von Malcolm Playfair Anderson bei Yurimaguas, Department Loreto, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Metachirus andersoni beschrieben, überführte Hershkovitz (1992) die Art in die Gattung Philander. Beruhend auf Analysen der Cytochrom-b-Sequenzen (Voss & Giarla, 2020) spaltete sich andersoni nach quica als nächstes von der Entwicklungslinie innerhalb der Gattung Philander ab. Nach kombinierten Datensätzen verschiedenere Gene stellt, wie hier auch im Stammbaum übernommen, andersoni die Schwesterart von nigratus dar (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024). Die Art ist nach dem amerikanischen Zoologen Malcolm Playfair Anderson benannt, der auch das Typusexemplar sammelte.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 223-307 mm; Schwanzlänge 255-332 mm; Hinterfußlänge ca. 41 mm; Ohrlänge 36-37 mm; Gewicht 225-600 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Ekuador; Kolumbien; Peru; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); Astúa, Pérez-Hernández & Costa (2021); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Hershkovitz (1992); Osgood (1913); Voss & Giarla (2020).

 

            Philander nigratus (Thomas, 1923) (Schwarze Vieraugenbeutelratte/Black Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1900.7.7.62 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 21. April 1900 von Perry Oveitt Simons bei Utcuyacu (ca. 1.600 m Höhe), Junín-Department, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Unterart Metachirus opossum nigratus beschrieben, wurde die Form zeitweise mit andersoni synonymisiert (Gardner, 2005) und schließlich von Voss & Giarla (2020) in den Artstatus erhoben. Beruhend auf Analysen der Cytochrom-b-Sequenzen (Voss & Giarla, 2020) spaltete sich nigratus nach quica und andersoni als nächstes von der Entwicklungslinie innerhalb der Gattung Philander ab. Nach kombinierten Datensätzen verschiedenere Gene stellt, wie hier auch im Stammbaum übernommen, nigratus die Schwesterart von andersoni dar (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 260-280 mm; Schwanzlänge 270-300 mm; Hinterfußlänge ca. 40 mm; Ohrlänge ca. 35 mm. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von andersoni geführt; Populationsentwicklung unbekannt. Das aus dem Latein stammende Artepitheton nigratus bedeutet „geschwärzt“ und bezieht sich auf die relativ dunkle Fellfärbung am Rücken.

·         Verbreitung: Südamerika (Peru).

·         Literatur: Astúa (2020; 2023); Astúa, Pérez-Hernández & Costa (2021); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Gardner (2005); Thomas (1923); Voss & Giarla (2020).

 

            Philander mcilhennyi Gardner & Patton, 1972 (McIlhenny-Vieraugenbeutelratte/McIlhenny’s Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: LSUMZ 16395 (Museum für Zoologie der Louisiana-Staatsuniversität Baton Rouge), adultes Weibchen, gesammelt am 10. April 1971 von Alfred L. Gardner bei Balta (ca. 300 m Höhe) am Fluss Curanja, Loreto- bzw. Ucayali-Department, Peru

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Als separate Art Philander mcilhennyi beschrieben, wurde die Form zeitweise auch in die Gattung Metachirops (Corbet & Hill, 1980) oder als Unterart von Philander andersoni (Hershkovitz, 1997) eingeordnet. Molekularbiologische und morphologische Analysen bestätigen aber den Artstatus (Voss, Díaz-Nieto & Jansa, 2018) und deuten auf eine engere Verwandtschaft zu Philander opossum hin (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024; Voss & Giarla, 2020). Die Art ist nach John S. McIlhenny benannt, der an der Louisiana-Staatsuniversität die biologische Erforschung der Neotropen vorantrieb.

·         Synonyme: Metachirops mcillhenyi Corbet & Hill, 1980 (Schreibfehler).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 287-307 mm; Schwanzlänge 265-377 mm; Gewicht 396-640 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); Corbet & Hill (1980); Costa et al. (2021); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Gardner & Patton (1972); Hershkovitz (1997); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020).

 

            Philander deltae Lew, Pérez-Hernández & Ventura, 2006 (Orinoko-Vieraugenbeutelratte/Deltaic Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MHNLS 10679 (Museum für Naturgeschichte La Salle Caracas), adultes Männchen, gesammelt am 10. Dezember 1996 von B. Rivas und Gilson Antonio Rivas im Waldreservat von Guarapiche, Monagas, Venezuela.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Vor der Erstbeschreibung anhand morphologischer Merkmale als separate Art wurden Exemplare der Form Philander opossum (Pérez-Hernández, 1989; Hershkovitz, 1997; Patton & da Silva, 1997; Linares, 1998) oder Philander andersoni (Pérez-Hernández, Soriano & Lew, 1994) zugeordnet. Da bisher zu deltae keine genetischen Analysen vorliegen sind Status und Verwandtschaftsverhältnisse unklar. Aufgrund der geographischen Nähe ist eine engere Verwandtschaft zur Spezies opossum wahrscheinlich, worauf sich auch die provisorische Einordnung hier im Stammbaum beruft. Das Artepitheton bezieht sich auf das Delta des Orinokos, in dessen Umfeld das Verbreitungsgebiet liegt.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ca. 207 mm; Schwanzlänge ca. 300 mm; Gewicht 148-350 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); Hershkovitz (1997); Lew, Pérez-Hernández & Ventura (2006); Linares (1998); Patton & da Silva (1997); Pérez-Hernández (1989); Pérez-Hernández, Soriano & Lew (1994); Pérez-Hernández, Ventura & López Fuster (2016).

 

            Philander opossum (Linnaeus, 1758) (Graue Vieraugenbeutelratte/Grey Four-eyed Opossum):

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Didelphis opossum beschrieben.

·         Synonyme: Didelphys frenata Illiger, 1815.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 200-331 mm; Schwanzlänge 195-335 mm; Hinterfußlänge 41-43 mm; Ohrlänge ca. 36 mm; Gewicht 200-674 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Suriname).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); de la Sancha et al. (2016); Linnaeus (1758).

 

            Philander canus (Osgood, 1913) (Gemeine Vieraugen-Beutelratte/Common Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: FMNH 19347 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), subadultes Männchen, gesammelt am 4. August 1912 von W. H. Osgood und M. P. Anderson bei Moyobamba, San Martín, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Metachirus canus beschrieben, ordnete Thomas (1928) die Form als Unterart von opossum ein. Patton & da Silva (1997) behielten den Unterartstatus bei, allerding in die Gattung Philander gegliedert. Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) belegten mit morphologischen und genetischen Analysen schließlich den Artstatus von canus. Die erst 2006 bzw. 2008 neu beschriebenen Arten Mondolfi-Vieraugenbeutelratte (Philander mondolfii) und Olrog-Vieraugenbeutelratte (Philander olrogi) wurden von Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) aufgrund der Resultate molekularbiologischer Untersuchungen zu Synonymen von canus erklärt. Das aus dem Latein stammende Artepitheton canus bedeutet „grau“ und bezieht sich auf die gräuliche Rückenfärbung.

·         Synonyme: Metachirus opossum crucialis Thomas, 1923 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1847.11.22.15 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt von Thomas Bridges bei Santa Cruz de la Sierra, Department Santa Cruz, Bolivien. Etymologie: Das lateinische Wort crucialis bedeutet eigentlich „kreuzförmig“, bezieht sich hier aber wohl auf den Fundort Santa Cruz); Philander mondolfii Lew, Pérez-Hernández & Ventura, 2006 (Holotypus/Terra typica: EBRG 17513 (Biologische Station Rancho Grande Maracay), adultes Männchen, gesammelt am 25. März 1990 von M. Bevilacqua, A. Ferrer A. und José Rafael Ochoa im Waldreservat von Imataca, Unidad V zwischen Tumeremo und Bochinche, Bolívar, Venezuela. Etymologie: Benannt nach dem venezolanischen Säugetierkundler Edgardo Mondolfi); Philander olrogi Flores, Barquez & Diaz, 2008 (Holotypus/Terra typica: CML 561 (Säugetiersammlung Lillo der Nationaluniversität von Tucumán), adultes Männchen, gesammelt am 15. Juli 1975 von Rubén Marcos Barquez und Ricardo Alberto Ojeda ca. 7 km nördlich Santa Rosa, Sara-Provinz, Department Santa Cruz, Bolivien. Etymologie: Benannt nach dem schwedischen, später in Argentinien lebenden Zoologen Claes Christian Olrog).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 200-331 mm; Schwanzlänge 190-380 mm; Hinterfußlänge 30-47 mm; Ohrlänge 31-44 mm; Gewicht 200-674 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von opossum geführt; Populationsentwicklung unbekannt. Die als Synonyme klassifizierten Taxa mondolfii und olrogi wurden von der IUCN mit Nicht gefährdet bzw. Daten defizitär bewertet.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Bolivien; Brasilien; Kolumbien; Paraguay; Peru; Uruguay; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); de la Sancha et al. (2016); Flores (2016); Flores, Barquez & Diaz (2008); Lew, Pérez-Hernández & Ventura (2006); Osgood (1913); Patton & da Silva (1997); Pérez-Hernández, Ventura & López Fuster (2016); Thomas (1923, 1928); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018).

 

            Philander pebas Voss, Díaz-Nieto & Jansa, 2018 (Pebas-Vieraugen-Beutelratte/Pebas Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MVZ 190343 (Museum für Wirbeltierzoologie Berkeley), adultes Männchen, gesammelt am 1. September 1991 von James Lloys Patton bei Igarapé Nova Empresa, am linken Ufer des Juruá-Flusses, Amazonas, Brasilien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Vor der Erstbeschreibung als separate Art wurden Individuen der Form Philander opossum (Woodman et al., 1991) oder P. canus (Nunes et al., 2006) zugeordnet. Nach genetischen Analysen (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024; Voss & Giarla, 2020) bildet pebas das Schwestertaxon zu canus. Das Artepitheton pebas leitet sich vom ausgedehnten See-Komplex Lago Pebas aus dem Miozän ab. In diesem Feuchtgebietskomplex liegt das Verbreitungsgebiet der Art.

·         Identifizierung/Beschreibung: Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Biologie/Ökologie: Zur Nahrung der Art gehören auch kleine Wirbeltiere wie beispielsweise Kröten.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Ekuador; Peru).

·         Literatur: Astúa (2015; 2020; 2023); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Negreiros Almeida et al. (2024); Nunes et al. (2006); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020); Woodman et al. (1991).

 

            Philander melanurus (Thomas, 1899) (Dunkle Vieraugenbeutelratte/Dark Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: BMNH 1897.11.7.61 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 11. April 1897 von William Frederick Henry Rosenberg bei Paramba, Rio Mira (ca. 1.100 m Höhe), Imbabura-Provinz, Ekuador.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Unterart Metachirus opossum melanurus beschrieben, erhoben Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) die Form anhand morphologischer und molekularbiologischer Daten in den Artstatus. Nach genetischen Analysen bildet melanurus das Schwestertaxon zu vossi (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024; Voss & Giarla, 2020). Das Artepitheton leitet sich von den griechischen Wörtern ab und bezieht sich auf die dunkle Schwanzfarbe der Tiere.

·         Synonyme: Metachirus fuscogriseus J. A. Allen, 1900 (Holotypus/Terra typica: AMNH MO-8252/AMNO MS-9920 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Männchen, vermutlich von der karibischen Küste Panamas, ursprüngliche Angabe zu Greytown, Nicaragua, unwahrscheinlich); Metachirus grisescens J. A. Allen, 1901 (Holotypus/Terra typica: AMNH M-15072 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York, adultes Weibchen, gesammelt im Juni 1898 von J. H. Batty am Río Cauca, Department Valle del Cauca, Kolumbien)

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 200-331 mm; Schwanzlänge 195-335 mm; Hinterfußlänge 38-68 mm; Ohrlänge 29-40 mm; Gewicht 200-674 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von opossum geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Guatemala; Honduras; Kolumbien; Nicaragua; Panama; möglicherweise auch Costa Rica).

·         Literatur: Allen (1900, 1901); Astúa (2015; 2020; 2023); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); de la Sancha et al. (2016); Thomas (1899); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020).

 

            Philander vossi Gardner & Ramírez-Pulido, 2020 (Fahle Vieraugen-Beutelratte/Northern Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 58158 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 24. Januar 1894 von Edward Alphonso Goldman und Edward William Nelson bei Orizaba, Veracruz, Mexiko.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Form wurde ursprünglich als Metachirus fuscogriseus pallidus J. A. Allen, 1901 beschrieben, von Allen (1911) aber später als Unterart in Philander opossum eingeordnet und schließlich von Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018) anhand morphologischer und molekularbiologischer Daten in den Artstatus erhoben. Gardner & Ramírez-Pulido (2020) stellten jedoch fest, dass der Name pallidus bereits durch Philander laniger pallidus Thomas, 1899 besetzt ist, weshalb sie für die Fahle Vieraugen-Beutelratte den neuen wissenschaftlichen Namen Philander vossi festlegten, benannt nach dem US-amerikanischen Säugetierforscher Robert Sheridan Voss, der Kurator in der Wirbeltierabteilung des Amerikanischen Museums für Naturkunde in New York ist. Nach genetischen Analysen bildet vossi das Schwestertaxon zu melanurus (das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa, 2024; Voss & Giarla, 2020).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 220-315 mm; Schwanzlänge 240-315 mm; Hinterfußlänge 35-50 mm; Ohrlänge 33-41 mm; Gewicht 200-600 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 22 Chromosomen.

·         Biologie/Ökologie: Die Beutelrattenart dient in Mexiko als Wirt für parasitische Würmer der Gattungen Gnathostoma, Strongyloides, Trichuris, Viannaia, Cruzia.

·         Bestand: Nicht bewertet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Belize; El Salvador; Mexiko; möglicherweise auch Costa Rica, Guatemala, Honduras und Nicaragua).

·         Literatur: Allen (1901, 1911); das Chagas Silva-Neto, Pavan & Astúa (2024); Gardner & Ramírez-Pulido (2020); Mosqueda-Cabrera et al. (2025); Panti-May et al. (2024); Thomas (1899); Voss, Díaz-Nieto & Jansa (2018); Voss & Giarla (2020).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Metachirini

 

 

Metachirini

 

Metachirus

 

 

Tribus Metachirini Hershkovitz, 1992 (Gattungsgruppe Nacktschwanzbeutelratten):

·         7 Arten in einer Gattung, davon eine Art unbeschrieben.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Metachirus Burmeister, 1854; nominotypische Art Metachirus myosuros (Temminck, 1824). Der Tribusname leitet sich von den griechischen Wörtern μετά für „hinter“ und χείρ für „Hand“ ab und bezieht sich darauf, dass die Zehen der Hinterpfoten frei sind und keine Schwimmhäute besitzen.

·         Literatur: Burmeister (1854); Hershkovitz (1992); Temminck (1824);.

 

            Genus Metachirus Burmeister, 1854 (Gattung Braune Nacktschwanzbeutelratten):

·         7 Arten, davon eine unbeschrieben.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Metachirus myosuros (Temminck, 1824). Der Stammbaum orientiert sich an den Ergebnissen von Miranda et al. (2023),  Voss, Fleck & Jansa (2019) und Vieira (2006). Die Gattung Metachirus ist nach Analysen von Miranda et al. (2023) rund 11,4 Millionen Jahre alt. Vor rund 6,3 Millionen Jahren spaltete sich die Gattung in zwei Äste, wobei der erste Ast sich vor ca. 3,3 Millionen in die Arten Metachirus aritanai und M. nudicaudatus aufteilte, die im nördlichen und nordöstlichen Bereich Südamerikas verbreitet sind. Der zweite Ast besteht wieder aus zwei Kladen, die sich vor 3,5 Millionen Jahren aufspalteten. Die erste Klade umfasst zwei Arten, die Mittelamerika und den Nordwesten Südamerikas abdecken und sich vor ca. 2,8 Mio. Jahren trennten. Hier sind diese genetischen Linien den Taxa dentaneus und colombianus zugeordnet. Zur Absicherung sind aber weitere molekularbiologische Untersuchungen notwendig. Die zweite Klade umfasst drei genetische Linien, von denen sich die erste (Südwestliches Amazonien) vor ca. 2,4 Mio. Jahren abtrennte und möglicherweise durch das Taxon tschudii abgedeckt wird. Die anderen beiden Linien umfassen M. myosuros vom Atlantischen Küstenwald sowie eine noch unbeschriebene Art aus dem östlichen Amazonien (Region des Flusses Teles Pires). Unklar ist noch die Stellung der südlichen Population. Möglicherweise stellt sie mit modestus eine eigene Art dar, doch vorläufig wird das Taxon mit myosuros synonymisiert. Der Gattungsname leitet sich von den griechischen Wörtern μετά für „hinter“ und χείρ für „Hand“ ab und bezieht sich darauf, dass die Zehen der Hinterpfoten frei sind und keine Schwimmhäute besitzen.

·         Synonyme: Metacherius Sanderson, 1949 (Schreibfehler).

·         Literatur: Burmeister (1854); Miranda et al. (2023); Sanderson (1949); Temminck (1824); Vieira (2006); Voss, Fleck & Jansa (2019).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Didelphinae > Metachirini > Metachirus

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus aritanai

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus nudicaudatus

 

 

 Metachirus

 

 

 

Metachirus colombianus

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus dentaneus

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus tschudii

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus myosuros

 

 

 

 

 

 

 

 

Metachirus sp.

 

 

 

 

 

 

 

            Genus Metachirus Burmeister, 1854 (Gattung Braune Nacktschwanzbeutelratten):

·         7 Arten, davon eine unbeschrieben.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Generotypus Metachirus myosuros (Temminck, 1824). Der Stammbaum orientiert sich an den Ergebnissen von Miranda et al. (2023),  Voss, Fleck & Jansa (2019) und Vieira (2006). Die Gattung Metachirus ist nach Analysen von Miranda et al. (2023) rund 11,4 Millionen Jahre alt. Vor rund 6,3 Millionen Jahren spaltete sich die Gattung in zwei Äste, wobei der erste Ast sich vor ca. 3,3 Millionen in die Arten Metachirus aritanai und M. nudicaudatus aufteilte, die im nördlichen und nordöstlichen Bereich Südamerikas verbreitet sind. Der zweite Ast besteht wieder aus zwei Kladen, die sich vor 3,5 Millionen Jahren aufspalteten. Die erste Klade umfasst zwei Arten, die Mittelamerika und den Nordwesten Südamerikas abdecken und sich vor ca. 2,8 Mio. Jahren trennten. Hier sind diese genetischen Linien den Taxa dentaneus und colombianus zugeordnet. Zur Absicherung sind aber weitere molekularbiologische Untersuchungen notwendig. Die zweite Klade umfasst drei genetische Linien, von denen sich die erste (Südwestliches Amazonien) vor ca. 2,4 Mio. Jahren abtrennte und möglicherweise durch das Taxon tschudii abgedeckt wird. Die anderen beiden Linien umfassen M. myosuros vom Atlantischen Küstenwald sowie eine noch unbeschriebene Art aus dem östlichen Amazonien (Region des Flusses Teles Pires). Unklar ist noch die Stellung der südlichen Population. Möglicherweise stellt sie mit modestus eine eigene Art dar, doch vorläufig wird das Taxon mit myosuros synonymisiert. Der Gattungsname leitet sich von den griechischen Wörtern μετά für „hinter“ und χείρ für „Hand“ ab und bezieht sich darauf, dass die Zehen der Hinterpfoten frei sind und keine Schwimmhäute besitzen.

·         Synonyme: Metacherius Sanderson, 1949 (Schreibfehler).

·         Literatur: Burmeister (1854); Miranda et al. (2023); Sanderson (1949); Temminck (1824); Vieira (2006); Voss, Fleck & Jansa (2019).

 

            Metachirus aritanai Miranda, Nunes, Machado, Farias, Menezes, Ardente, dos Santos-Filho, Bredin & da Silva, 2023 (Aritana-Nacktschwanzbeutelratte/Aritana’s Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: INPA 2831 (Nationalinstitut für Amazonasforschung Manaus), adultes Männchen, gesammelt am 8. Juli 1999 von Maria Nazareth F. da Silva im Tapirapé-Aquiri-Wald, bei der Gemeinde Marabá, Bundesstaat Pará, Brasilien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Art ist nach Aritana Yawalapiti benannt, der bis zum August 2020 dem indigenen Stamm Yawalapiti am oberen Abschnitt des Flusses Xingu vorstand.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 243-275 mm; Gewicht ca. 380 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien: Pará).

·         Literatur: Brito et al. (2021); Miranda et al. (2023).

 

            Metachirus nudicaudatus (É. Geoffroy Saint-Hilaire, 1803) (Guyana-Nacktschwanzbeutelratte/Guianan Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: MNHN-ZM-MO-1990-420 (Nationalmuseum für Naturgeschichte Paris), adultes Weibchen, gesammelt von Joseph Martin bei Cayenne, Französisch-Guayana.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Didelphis nudicaudata beschrieben, überführte Goldman (1912) die Art in die Gattung Metachirus. Das Taxon myosuros wurde lange, wie auch alle anderen innerhalb der Gattung beschriebenen Taxa, als Synonym von nudicaudatus betrachtet. Voss, Fleck & Jansa (2019) identifizierten myosuros aber als separate Art und ordneten die anderen Taxa als Synonyme in myosuros ein. Das Artepitheton nudicaudatus leitet sich von den lateinischen Wörtern nudus für „nackt“ und cauda für „Schwanz“ ab und bezieht sich auf den kaum behaarten Schwanz der Art.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 255-298 mm, ♀ 240-290 mm; Schwanzlänge ♂ 302-380 mm, ♀ 326-370 mm; Hinterfußlänge ♂ 44-51 mm, ♀ 41-46 mm; Ohrlänge ♂ 35-40 mm, ♀ 35-41 mm; Gewicht ♂ 330-480 g, ♀ 260-410 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Population stabil.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Suriname; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Brito et al. (2021); Geoffroy Saint-Hilaire (1803); Goldman (1912); Voss, Fleck & Jansa (2019).

 

            Metachirus colombianus J. A. Allen, 1900 (Allen-Nacktschwanzbeutelratte/Colombian Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: AMNH 15448 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Männchen, gesammelt am 20. April 1899 von H. H. Smith bei Donamo, Santa-Marta-Distrikt, Kolumbien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Form wurde zunächst als Unterart Metachirus nudicaudatus colombianus beschrieben und lange auch entsprechend gelistet (Gardner, 2005; Astúa, 2015). Genetische Analysen (Miranda et al., 2023) zeigen jedoch, dass die Gattung Metachirus mehrere separate Entwicklungslinien enthält. Darunter befindet sich eine nördliche Klade, die sich bereits vor ca. 3,5 Millionen Jahren von den anderen südamerikanischen Formen abspaltete und sich dann vor ca. 2,8 Millionen Jahren noch einmal in eine mittelamerikanische Linie und eine im nordwestlichen Südamerika verbreitete Linie trennte. Aufgrund unklarer Verbreitungsgrenzen werden diese derzeit meist mit myosuros synonymisiert (Astúa, 2020, 2023; Voss, Fleck & Jansa, 2019; Zijlstra, 2025. Hier werden sie provisorisch als colombianus (nordwestliches Südamerika) und dentaneus (Mittelamerika) geführt. Das Artepitheton colombianus leitet sich von Kolumbien ab, wo das Typusexemplar gefunden wurde.

·         Synonyme: Metachirus nudicaudatus phaeurus Thomas, 1901 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1901.3.19.44 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 19. Mail 1900 bei San Javier am unteren Cachavi-Fluss, Esmeraldas, Ekuador); Metachirus nudicaudatus antioquiae J. A. Allen, 1916 (AMNH M-37751 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Männchen, gesammelt am 1. Januar 1915 von Boyle und Miller bei La Frijolera, Antioquia-Department, Kolumbien); Metachirus nudicaudatus imbutus Thomas, 1923 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1913.10.24.71 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt am 12. Juni 1913 von Gilbert Hammond bei Mindo, Pichincha, Ekuador); Metachirus nudicaudatus inbutus Gardner & Dagosto, 2008 (Schreibfehler von imbutus).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 238-240 mm; Schwanzlänge 259-260 mm; Hinterfußlänge 38-39 mm; Ohrlänge ca. 29 mm. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Ekuador; Kolumbien; Peru; Venezuela).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Allen (1900, 1916); Brito et al. (2021); Gardner (2005); Miranda et al. (2023); Thomas (1901, 1923); Voss, Fleck & Jansa (2019); Zijlstra (2025).

 

            Metachirus dentaneus Goldman, 1912 (Mittelamerikanische Nacktschwanzbeutelratte/Central American Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: USNM 172732 (Vereinigte Staaten Nationalmuseum Washington), adultes Männchen, gesammelt am 12. Januar 1911 von Edward Alphonso Goldman bei Gatun, Kanalzone, Panama.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Die Form wurde zunächst als Unterart Metachirus nudicaudatus dentaneus beschrieben und lange auch entsprechend gelistet (Gardner, 2005; Astúa, 2015). Genetische Analysen (Miranda et al., 2023) zeigen jedoch, dass die Gattung Metachirus mehrere separate Entwicklungslinien enthält. Darunter befindet sich eine nördliche Klade, die sich bereits vor ca. 3,5 Millionen Jahren von den anderen südamerikanischen Formen abspaltete und sich dann vor ca. 2,8 Millionen Jahren noch einmal in eine mittelamerikanische Linie und eine im nordwestlichen Südamerika verbreitete Linie trennte. Aufgrund unklarer Verbreitungsgrenzen werden diese derzeit meist mit myosuros synonymisiert (Astúa, 2020, 2023; Voss, Fleck & Jansa, 2019; Zijlstra, 2025. Hier werden sie provisorisch als colombianus (nordwestliches Südamerika) und dentaneus (Mittelamerika) geführt. Das aus dem Latein stammende Artepitheton dentaneus bedeutet „drohend“, abgeleitet von dens für „Zahn“. Der Autor bezog sich vermutlich auf die kräftigere Bezahnung gegenüber colombianus.

·         Identifizierung/Beschreibung: Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Costa Rica; Guatemala; Mexiko; Nicaragua; Panama).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Brito et al. (2021); Gardner (2005); Goldman (1912); Miranda et al. (2023); Voss, Fleck & Jansa (2019); Zijlstra (2025).

 

            Metachirus tschudii J. A. Allen, 1900 (Tschudi-Nacktschwanzbeutelratte/Tschudi’s Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: AMNH 10107/11815 (Amerikanisches Museum für Naturgeschichte New York), adultes Weibchen, gesammelt am 30. August 1894 von O. T. Baron im Gebiet Santa Rosa de Huayabamba (ca. 1.677 m Höhe), Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Exemplare der Form wurden zunächst myosuros (Tschudi, 1844) zugeordnet, bis Allen sie als eigene Art beschrieb. Später wurde tschudii als Unterart in nudicaudatus (Gardner, 2005; Astúa, 2015) eingegliedert. Aufgrund unklarer Verbreitungsgrenzen und daraus folgenden Abgrenzungsproblemen wird das Taxon derzeit meist mit myosuros synonymisiert (Astúa, 2020, 2023; Voss, Fleck & Jansa, 2019; Zijlstra, 2025. Hier wird tschudii als Bezeichnung für den nach Miranda et al. (2023) die südwest-amazonische Region umfassenden Entwicklungszweig geführt, der sich vor ca. 2,4 Millionen Jahren vom östlichen Entwicklungszweig, der myosuros und eine noch unbeschriebene Art enthält, abtrennte. Die Art ist nach dem schweizerischen Naturforscher Johann Jakob von Tschudi benannt.

·         Synonyme Metachirus nudicaudatus bolivianus J. A. Allen, 1901 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1901.6.7.73 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 14. Februar 1901 von Perry Oveitt Simons bei Chulumani (ca. 2.000 m Höhe), Yungas, Bolivien); Metachirus nudicaudatus infuscus Thomas, 1923 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1902.7.27.8 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Männchen, gesammelt von G. Ockenden am Fluss Inambari, Department Madre de Dios, Peru).

·         Identifizierung/Beschreibung: Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Bolivien; Brasilien; Paraguay).

·         Literatur: Allen (1900, 1901); Astúa (2015, 2020, 2023); Brito et al. (2021); Gardner (2005); Miranda et al. (2023); Thomas (1923); Tschudi (1844); Voss, Fleck & Jansa (2019); Zijlstra (2025).

 

            Metachirus myosuros (Temminck, 1824) (Temminck-Nacktschwanzbeutelratte/Common Brown Four-eyed Opossum):

·         Holotypus/Lectotypus/Terra typica: Ursprünglich wurde kein Typusexemplar festgelegt, erst Pohle (1927) bestimmte einen Lectotypus. NMW B-2589 (Naturhistorisches Museum Wien), Weibchen, gesammelt am 25. Januar 1822 von Johann Baptist Natterer in Ypanema, Bundesstaat São Paulo, Brasilien.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Zunächst als Didelphis myosuros beschrieben. Das Taxon modestus wurde zeitweise als Unterart von nudicaudatus geführt (Gardner, 2005; Astúa, 2015), könnte möglicherweise aber eine eigene Art darstellen. Aktuell wird modestus als Synonym von myosuros gelistet (Voss, Fleck & Jansa, 2019; Zijlstra, 2025). Das Artepitheton leitet sich von den griechischen Wörtern μῦς für „Maus“ und ουρά für „Schwanz“ ab und bezieht sich auf den mäuseähnlichen Schwanz, wobei aufgrund der spärlichen Behaarung wohl eher rattenähnlich gemeint war.

·         Synonyme: Didelphis myosurus Schmarda, 1853 (Schreibfehler); Metachirus nudicaudatus personatus Miranda-Ribeiro, 1936 (Lectotypus/Terra typica: Zunächst kein Typusexemplar vorhanden, Miranda-Ribeiro (1955) bestimmte später einen Lectotypus. MN 1218 (Nationalmuseum Rio de Janeiro), Männchen, Serra da Piraquara, Rio de Janeiro, Brasilien; Metachirus nudicaudatus modestus Thomas, 1923 (Holotypus/Terra typica: BMNH 1903.2.3.38 (Britisches Museum für Naturgeschichte London), adultes Weibchen, gesammelt am 2. September 1902 von W. Foster bei Sapucay, Paraguarí, Paraguay).

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge ♂ 217-285 mm, ♀ 218-278 mm; Schwanzlänge ♂ 256-336 mm, ♀ 265-336 mm; Hinterfußlänge ♂ 40-47 mm, ♀ 37-46 mm; Ohrlänge 30-39 mm; Gewicht ♂ 248-485 g, ♀ 270-430 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Argentinien; Brasilien; Paraguay).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Brito et al. (2021); Miranda-Ribeiro (1936, 1955); Pohle (1927); Schmarda (1853); Temminck (1824); Thomas (1923); Voss, Fleck & Jansa (2019); Zijlstra (2025).

 

            Metachirus sp. [Miranda et al., 2023] (Teles-Pires-Nacktschwanzbeutelratte/Teles Pires Brown Four-eyed Opossum):

·         Taxonomie/Phylogenie: Nacktschwanzbeutelratten aus der südöstlichen Region wurden in der Vergangenheit zunächst nudicaudatus (Gardner, 2005; Astúa, 2015) und später myosuros (Voss, Fleck & Jansa, 2019) zugeordnet. Nach genetischen Analysen von Miranda et al. (2023) handelt es sich zumindest bei der Population um den Fluss Teles Pires jedoch um eine eigenständige Art, die sich vor rund 2 Millionen Jahren von der Schwesterart myosuros trennte. Eine genaue Beschreibung und eine genaue Abgrenzung des Verbreitungsgebiets liegen derzeit noch nicht vor.

·         Bestand: Nicht bewertet; von IUCN nicht getrennt von nudicaudatus geführt; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Identifizierung/Beschreibung: Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4. Karyotyp 2n = 14 Chromosomen.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien).

·         Literatur: Astúa (2015); Brito et al. (2021); Gardner (2005); Miranda et al. (2023); Voss, Fleck & Jansa (2019).

 

 

 

Didelphimorphia > Didelphidae > Hyladelphinae > Hyladelphys

 

 

Hyladelphinae

 

Hyladelphys

 

Hyladelphys kalinowskii

 

 

 

Subfamilia Hyladelphinae Voss & Jansa, 2009 (Familie Peruanische Zwergbeutelratten):

·         1 Art in einer Gattung.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Nominotypische Gattung Hyladelphys Voss, Lunde & Simmons, 2001; nominotypische Art. Neben der rezenten Gattung Hyladelphys wird auch die fossile Gattung Sairadelphys Oliveira, Villa Nova, Goin & Avilla, 2011 (Der Gattungsname leitet sich von dem Tupi-Wort saíra für „klein“ und dem griechischen Wort δελφύς für „Gebärmutter“ ab, was sich auf die relativ kleine Körpergröße und die besondere Morphologie der Gebärmutter bei Beuteltieren bezieht) mit der Art Tocantins-Zwergbeutelratte (Sairadelphys tocantinensis Oliveira, Villa Nova, Goin & Avilla, 2011. Holotypus/Terra typica: UFPE DGEO 6745 (Bundesuniversität von Pernambuco), Höhle von Gruta dos Mouras, nahe Gemeinde Aurora do Tocantins, Bundesstaat Tocantins, Brasilien, Pleistozän. Etymologie: Das Artepitheton leitet sich nach dem Bundesstaat Tocantins benannt, in dem das Typusexemplar gefunden wurde) zu Hyladelphinae gerechnet. Der Unterfamilienname leitet sich von den griechischen Wörtern ὕλη für „Wald“ und δελφύς für „Gebärmutter“ ab. Er bezieht sich auf die Lebensweise der Art und die für Beuteltiere typische Gebärmutter bzw. Jungenentwicklung.

·         Literatur: Oliveira et al. (2011); Voss & Jansa (2009).

 

            Genus Hyladelphys Voss, Lunde & Simmons, 2001 (Gattung Kalinowski-Zwergbeutelratten):

·         1 Art.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Hyladelphys kalinowskii (Hershkovitz, 1992). Der Gattungsname leitet sich von den griechischen Wörtern ὕλη für „Wald“ und δελφύς für „Gebärmutter“ ab. Er bezieht sich auf die Lebensweise der Art und die für Beuteltiere typische Gebärmutter bzw. Jungenentwicklung.

·         Literatur: Hershkovitz (1992); Voss, Lunde & Simmons (2001).

 

            Hyladelphys kalinowskii (Hershkovitz, 1992) (Kalinowski-Zwergbeutelratte/Kalinowski’s Mouse Opossum):

·         Holotypus/Terra typica: FMNH 89991 (Feldmuseum für Naturgeschichte Chicago), adultes Weibchen, gesammelt von Celestino Kalinowski am 9. Juli 1958 bei Hacienda Cadena (890 m Höhe), Marcapata, Department, Cuzco, Peru.

·         Taxonomie/Phylogenie/Etymologie: Ursprünglich als Gracilinanus kalinowskii beschrieben, überführten Voss, Lunde & Simmons (2001) die Art in die neue Gattung Hyladelphys. Die Art ist nach Celestino Kalinowski benannt, der auch das Typusexemplar sammelte.

·         Identifizierung/Beschreibung: Kopf-Rumpf-Länge 75-95 mm; Schwanzlänge 102-117 mm; Gewicht 10-20 g. Zahnformel 50 = I 5/4 C 1/1 P 3/3 M 4/4.

·         Bestand: Nicht gefährdet; Populationsentwicklung unbekannt.

·         Verbreitung: Südamerika (Brasilien; Französisch-Guayana; Guyana; Peru; Suriname; möglicherweise auch Bolivien und Kolumbien).

·         Literatur: Astúa (2015, 2020, 2023); Astúa et al. (2021); Hershkovitz (1992).

 

 

 

Referenzen:

1)      Allen, G. M. & Barbour, T. (1923). Mammals from Darien. Bulletin of the Museum of Comparative Zoology 65 (8): 259-274.

2)      Allen, J. A. (1900). Descriptions of new American marsupials. Bulletin of the American Museum of Natural History 13 (16): 191-199.

3)      Allen, J. A. (1900). Note on the generic names Didelphis and Philander. Bulletin of the American Museum of Natural History 13 (15): 185-190.

4)      Allen, J. A. (1901). Descriptions of two new opposums of the genus Metachirus. Bulletin of the American Museum of Natural History 14 (15): 213-218.

5)      Allen, J. A. (1901). New South American Muridae and a new Metachirus. Bulletin of the American Museum of Natural History 14 (24): 405-412.

6)      Allen, J. A. (1911). Mammals from Venezuela collected by Mr. M. A. Carriker, Jr., 1909-1911. Bulletin of the American Museum of Natural History 30 (10): 239-273.

7)      Allen, J. A. (1916). New South American mammals. Bulletin of the American Museum of Natural History 35 (11): 83-87.

8)      Anthony, H. E. (1922). Preliminary report on Ecuadorean mammals. No. 2. American Museum Novitates 32: 1-6.

9)      Astúa, D. (2015). Family Didelphidae (Opossums). S. 70-186 in: Wilson, D. E. & Mittermeier, R. A. (Hrsg.) (2015). Handbook of the Mammals of the World. Volume 5 – Monotremes and Marsupials. Lynx Edicions, Barcelona.

10)  Astúa, D. (2020). Family Didelphidae (Opossums). S. 42-57 in: Burgin, C. J., Wilson, D. E., Mittermeier, R. A., Rylands, A. B., Lacher, T. E. & Sechrest, W. (Hrsg.) (2020). Illustrated Checklist of the Mammals of the World Volume 1 – Monotremata to Rodentia. Lynx Edicions, Barcelona.

11)  Astúa, D. (2023). Family Didelphidae – Opossums. S. 31-41 in: Lynx Nature Books (2023). All the Mammals of the World. Lynx Nature Books, Barcelona.

12)  Astúa, D., Cáceres, N., Brito, D. & Costa, L. P. (2021). Hyladelphys kalinowskii. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T9422A197309523. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T9422A197309523.en. Stand 30. Januar 2026.

13)  Astúa, D., Cáceres, N., Brito, D. & Costa, L. P. (2021). Monodelphis americana. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T96866849A197321762. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T96866849A197321762.en. Stand 30. Januar 2026.

14)  Astúa, D., de la Sancha, N. & Costa, L. P. (2021). Didelphis aurita. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40500A197310366. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40500A197310366.en. Stand 30. Januar 2026.

15)  Astúa, D., Lew, D., Costa, L. P. & Pérez-Hernández, R. (2021). Didelphis marsupialis. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40501A197310576. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40501A197310576.en. Stand 30. Januar 2026.

16)  Astúa, D., Pérez-Hernández, R. & Costa, L. P. (2021). Philander andersoni. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40515A197311087. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40515A197311087.en. Stand 30. Januar 2026.

17)  Bangs, O. (1898). A new murine opossum from Margarita Island. Proceedings of the Biological Society of Washington 12: 95-96.

18)  Bangs, O. (1898). Descriptions of some new mammals from the Sierra Nevada de Santa Marta, Colombia. Proceedings of the Biological Society of Washington 12: 161-165.

19)  Bangs, O. (1902). Chiriqui Mammalia. Bulletin of the Museum of Comparative Zoology 39 (2): 17-51.

20)  Beck, R. M. D., Godthelp, H., Weisbecker, V., Archer, M. & Hand, S. J. (2008). Australia’s oldest marsupial fossils and their biogeographical implications. PloS ONE 3 (3): e1858.

21)  Beck, R. M. D. & Taglioretti, M. L. (2020). A nearly complete juvenile skull of the marsupial Sparassocynus derivatus from the Pliocene of Argentina, the affinities of “Sparassocynids“, and the diversification of opossums (Marsupialia; Didelphimorphia; Didelphidae). Journal of Mammalian Evolution 27 (3): 385-417.

22)  Bonvicino, C. R., Lazar, A., Povill, C., Caramaschi, F. P., de Freitas, T. P. T., Crisóstomo, C. F., Botelho, A. L. M. & D’Andrea, P. S. (2022). Phylogeny of didelphid marsupials (Didelphimorphia) from Acre, western Amazonia. Mammalian Biology 102 (5-6): 1997-2015.

23)  Borowski, G. H. (1780). Gemeinnüzzige Naturgeschichte des Thierreichs. 1. Bandes 2. Stück, Säugthiere. Vierfüßige Thiere. Gottlieb August Lange, Berlin.

24)  Brisson, M. J. (1762). Regnum animale in Classes IX. Distribiutum, sive synopsis methodica sistens generalem Animalium distributionem in Classes IX, & duarum primarum Classium, Quadrupedum scilicet & Cetaceorum, particularem divisionem in Ordines, Sectiones, Genera & Species. Editio altera auctior. Theodorus Haak, Leiden.

25)  Brito, D., Astúa, D., Lew, D. & de la Sancha, N. (2021). Metachirus nudicaudatus. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40509A197311536. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40509A197311536.en. Stand 30. Januar 2026.

26)  Brito, D., Astúa, D., Lew, D., Soriano, P. & Emmons, L. (2021). Caluromys philander. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T3649A197321055. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T3649A197321055.en. Stand 30. Januar 2026.

27)  Brito, D., Astúa, D., Lew, D., Soriano, P. & Emmons, L. (2021). Marmosa murina. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40505A197308868. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40505A197308868.en. Stand 30. Januar 2026.

28)  Brongniart, A. (1792). Catalogue des Mammifères de Cayenne par M. Le Blond. Actes de la Sociéte d’Histoire Naturelle de Paris 1 (1): 115.

29)  Bucher, J. E. & Hoffmann, R. S. (1980). Caluromys derbianus. Mammalian Species 12 (140): 1-4.

30)  Burmeister, H. (1854). Systematische Uebersicht der Thiere Brasiliens, welche während einer Reise durch die Provinzen von Rio de Janeiro und Minas geraës gesammelt oder beobachtet wurden. Erster Theil. Säugethiere (Mammalia). Verlag von Georg Reimer, Berlin.

31)  Cabrera, Á. (1913). Dos mamíferos nuevos de la fauna neotropical. Trabajos del Museo de Ciencias Naturales, Serie Zoológica 9: 1-15.

32)  Cabrera, Á. (1919). Genera Mammalium. Monotremata. Marsupialia. Museo Nacional de Ciencias Naturales, Madrid.

33)  Cáceres, N., Solari, S. & Tarifa, T. (2016). Marmosa lepida. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T12814A22173952. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-3.RLTS.T12814A22173952.en. Stand 30. Januar 2026.

34)  Caramaschi, F. P., Nascimento, F. F., Cerqueira, R. & Bonvicino, C. R. (2010). Genetic diversity of wild populations of the grey short-tailed opossum, Monodelphis domestica (Didelphimorphia: Didelphidae), in Brazilian landscapes. Biological Journal of the Linnean Society 104 (2): 251-263.

35)  Carvalho, B. A., Oliveira, L. F. B., Langguth, A., Freygang, C. C., Ferraz, R. S. & Mattevi, M. S. (2011). Phylogenetic relationships and phylogeographic patterns in Monodelphis (Didelphimorphia: Didelphidae). Journal of Mammalogy 92 (1): 121-133.

36)  Carvalho, B. A., Oliveira, L. F. B. & Mattevi, M. S. (2009). Phylogeny of Thylamys (Didelphimorphia, Didelphidae) species, with special reference to Thylamys karimii. Iheringia, Série Zoologia 99 (4): 419-425.

37)  Corbet, G. B. & Hill, J. E. (1980). A World List of Mammalian Species. British Museum of Natural History, London.

38)  Corbet, G. B. & Hill, J. E. (1991). A World List of Mammalian Species. Third Edition. Oxford University Press, London.

39)  Costa, L. P., Astúa, D., Brito, D. & Cáceres, N. (2021). Philander mcilhennyi. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T136501A197311360. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T136501A197311360.en. Stand 30. Januar 2026.

40)  Costa, L. P., Astúa, D., Brito, D., Lew, D. & Tarifa, T. (2021). Caluromys lanatus. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T3648A197310136. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T3648A197310136.en. Stand 30. Januar 2026.

41)  Costa, L. P., Astúa, D., Brito, D., Soriano, P. & Lew, D. (2021). Didelphis albiventris. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40489A197310863. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40489A197310863.en. Stand 30. Januar 2026.

42)  Creighton, G. K. & Gardner, A. L. (2007). Genus Marmosa. S. 51-61 in: Gardner, A. L. (2007). Mammals of South America Volume 1 – Marsupials, Xenarthrans, Shrews, and Bats. The University of Chicago Press, Chicago.

43)  Das Chagas Silva-Neto, F., Pavan, S. E. & Astúa, D. (2024). Evolution, divergence, and convergence in the mandibles of opossums (Didelphidae, Didelphimorphia). Current Zoology 70 (4): 488-504.

44)  De Ávila-Pires, F. D. (1964). Mamíferos colecionados na região do Rio Negro (Amazonas, Brasil). Boletim do Museu Paraense Emílio Goeldi, Nova Série, Zoologia 42: 1-23.

45)  De la Sancha, N., Brito, D. & Costa, L. (2016). Philander frenatus. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136375A22177125. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-2.RLTS.T136375A22177125.en. Stand 30. Januar 2026.

46)  De Miranda-Ribeiro, A. (1936). Didelphia ou Mammalia-Ovovivipara. Marsupiaes, didelphos, pedimanos ou metatherios. Revista do Museu Paulista 20: 245-427.

47)  De Miranda-Ribeiro, A. (1955). Tipos das espécies e subespécies do Prof. Alipio de Miranda Ribeiro depositados no Museu Nacional. Archivos do Museu Nacional do Rio de Janeiro 42: 389-417.

48)  Desmarest, A. G. (1821). Mammalogie ou description des espèces de mammifères. Première partie, contenant les ordres des bimanes, des quadrumanes et des carnassiers. Veuve Agasse, Paris.

49)  Erxleben, C. P. (1777). Systema regni animalis per classes, ordines, genera, species, varietates. Synonymia et historia animaliam. Classis 1. Mammalia. Weygandsche Buchhandlung, Leipzig.

50)  Feijó, A. & Voss, R. S. (2019). A neotype for Didelphis marsupialis Linnaeus, 1758. American Museum Novitates 3923: 1-11.

51)  Flores, D. (2016). Philander olrogi. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T199832A22177217. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-2.RLTS.T199832A22177217.en. Stand 30. Januar 2026.

52)  Flores, D. A., Barquez, R. M. & Díaz, M. M. (2008). A new species of Philander Brisson, 1762 (Didelphimorphia, Didelphidae). Mammalian Biology 73 (1): 14-24.

53)  Flower, W. H. & Lydekker, R. (1891). An Introduction to the Study of Mammals, Living and Extinct. Adam and Charles Black, London.

54)  Fonseca, R. & Astúa, D. (2015). Geographic variation in Caluromys derbianus und Caluromys lanatus (Didelphimorphia: Didelphidae). Zoologia (Curitiba) 32 (2): 109-122.

55)  Gardner, A. L. (1993). Order Didelphimorphia. S. 15-23 in: Wilson, D. E. & Reeder, D. M. (Hrsg.) (1993). Mammal Species of the World – Second Edition. Smithsonian Institution Press, Washington.

56)  Gardner, A. L. (2005). Order Didelphimorphia. S. 3-18 in: Wilson, D. E. & Reeder, D. M. (Hrsg.) (2005). Mammal Species of the World Volume 1 – Third Edition. Johns Hopkins University Press, Baltimore.

57)  Gardner, A. L. & Dagosto, M. (2008). Tribe Metachirini. S. 35-39 in: Gardner, A. L. (2008). Mammals of South America. Volume 1: Marsupials, Xenarthrans, Shrews, and Bats. University of Chicago Press, Chicago.

58)  Gardner, A. L. & Patton, J. L. (1972). New species of Philander (Marsupialia: Didelphidae) and Mimon (Chiroptera: Phyllostomidae) from Peru. Occasional Papers of the Museum of Zoology, Louisian State University 43 (1): 1-12.

59)  Gardner, A. L. & Ramírez-Pulido, J. (2020). Type localities of Mexican land mammals, with comments on taxonomy and nomenclature. Special Publications, Museum of Texas Tech University 73: 1-134.

60)  Geoffroy Saint-Hilaire, É. (1803). Catalogue des Mammifères du Muséum National d’Histoire Naturelle. Paris.

61)  Giarla, T. C. & Voss, R. S. (2020). On the identity of Victoria’s mouse opossum, Marmosa regina Thomas, 1898. American Museum Novitates 3960: 1-16.

62)  Giarla, T. C., Voss, R. S. & Jansa, S. A. (2010). Species limits and phylogenetic relationships in the didelphid marsupial genus Thylamys based on mitochondrial DNA sequences and morphology. Bulletin of the American Museum of Natural History 346: 1-67.

63)  Giarla, T. C., Voss, R. S., Teta, P. & Pavan, S. E. (2025). On the phylogenetic relationships and taxonomic status of the single-striped opossum Monodelphis unistriata (Didelphimorphia: Didelphidae). American Museum Novitates 4040: 1-12.

64)  Gill, T. N. (1872). Arrangement of the families of mammals. With analytical tables. Smithsonian Miscellaneous Collections 11 (1): 1-98.

65)  Goldman, E. A. (1911). Three new mammals from Central and South America. Proceedings of the Biological Society of Washington 24: 237-240.

66)  Goldman, E. A. (1912). Descriptions of twelve new species and subspecies of mammals from Panama. Smithsonian Miscellaneous Collection 56 (36): 1-11.

67)  Goldman, E. A. (1920). Mammals of Panama. Smithsonian Miscellaneous Collection 69 (5): 1-309.

68)  Goodwin, G. G. (1946). Mammals of Costa Rica. Bulletin of the American Museum of Natural History 87 (5): 275-473.

69)  Gray, J. E. (1821). On the natural arrangement of vertebrose animals. The London Medical Repository Monthly Journal and Review 15: 296-310.

70)  Gutiérrez, E. E., Jansa, S. A. & Voss, R. S. (2010). Molecular systematics of mouse opossums (Didelphidae: Marmosa): Assessing species limits using mitochondrial DNA sequences with comments on phylogenetic relationships and biogeography. American Museum Novitates 3692: 1-22.

71)  Handley, C. O. Jr. (1966). Checklist of the mammals of Panama. S. 753-795 in: Wenzel, R. L. & Tipton, V. J. (1966). Ectoparasites of Panama. Field Museum of Natural History, Chicago.

72)  Handley, C. O. Jr. & Gordon, L. K. (1979). New species of mammals from northern South America: Mouse possums, genus Marmosa Gray. S. 65-72 in: Eisenberg, J. F. (Hrsg.) (1979). Vertebrate Ecology in the Northern Neotropics. Smithsonian Institution Press, Washington.

73)  Hershkovitz, P. (1959). Nomenclature and taxonomy of the Neotropical mammals described by Olfers, 1818. Journal of Mammalogy 40 (3): 337-353.

74)  Hershkovitz, P. (1992). The South American gracile mouse opossums, genus Gracilinanus Gardner and Creighton, 1989 (Marmosidae, Marsupialia): A taxonomic review with notes on general morphology and relationships. Fieldiana Zoology 70: 1-56.

75)  Hershkovitz, P. (1997). Composition of the family Didelphidae Gray, 1821 (Didelphoidea: Marsupialia), with a review of the morphology and behavior of the included four-eyed pouched opossums of the genus Philander Tiedemann. Fieldiana Zoology 86: 1-103.

76)  Hollister, N. (1914). Four new mammals from tropical America. Proceedings of the Biological Society of Washington 27: 103-106.

77)  Husson, A. M. (1978). The mammals of Suriname. Zoölogische Monographieën 2: 1-569.

78)  Illiger, J. K. W. (1815). Ueberblick der Säugthiere nach ihrer Vertheilung über die Welttheile. Abhandlungen der physikalischen Klasse der Königlich-Preußischen Akademie der Wissenschaften aus den Jahren 1804-1811: 39-159.

79)  Jansa, S. A., Barker, F. K. & Voss, R. S. (2014). The early diversification history of didelphid marsupials: A window into South America’s “splendid isolation“. Evolution 68 (3): 684-695.

80)  Jansa, S. A. & Voss, R. S. (2008). Phylogenetic relationships of the marsupial genus Hyladelphys based on nuclear gene sequences and morphology. Journal of Mammalogy 86 (5): 853-865.

81)  Jentink, F. A. (1888). Catalogue systématique des mammifères (rongeurs, insectivores, cheiroptères, édentés et marsupiaux). Muséum d’Histoire Naturelle des Pays-Bas 12: 1-280.

82)  Kerr, R. (1792). The Animal Kingdon, or Zoological System of the celebrated Sir Charles Linnaeus. Class I. Mammalia. A Strahan, T. Cadell, and We. Creech, Edinburgh.

83)  Kirsch, J. A. (1977). The comparative serology of Marsupialia, and a classification of marsupials. Australian Journal of Zoology, Supplementary Series 52: 1-152.

84)  Lesson, R. P. (1842). Nouveau tableau du règne animal. Mammifères. Arthus Bertrand, Paris.

85)  Lew, D., Pérez-Hernández, R. & Ventura, J. (2006). Two new species of Philander (Didelphimorphia, Didelphidae) from northern South America. Journal of Mammalogy 87 (2): 224-237.

86)  Liais, E. (1872). Climats, géologie, faune et géographie botanique du Brésil. Garnier Frères, Paris.

87)  Lim, B. K., Engstom, M. D., Patton, J. C. & Bickham (2010). Molecular phylogenetics of Reig’s short-tailed opossum (Monodelphis reigi) and its distributional range extension into Guyana. Mammalian Biology 75 (4): 287-293.

88)  Linares, O. J. (1998). Mamíferos de Venezuela. Soiciedad Conservacionista Audubon de Venezuela, Caracas.

89)  Linnaeus, C. (1758). Systema naturae per regna tria naturae, secundum classes, ordines, genera, species, cum characteribus, differentiis, synonymis, locis, Tomus I. Editio decima, reformata. Laurentius Salvius, Stockholm.

90)  Lund, P. W. (1839). Coup d’oeil sur les espèces éteintes de Mammifères du Brésil; extrait de quelques mémoires présentés à l’Académie Royale des Sciences de Copenhague. Annales des Sciences Naturelles, 2de Série 11: 214-234.

91)  Lund, P. W. (1840). Blik paa Brasiliens Dyreverden før sidste Jordomvæltning. Tredje Afhandling: Fortsættelse af Pattedyrene. Det Kongelige Danske Videnskabernes Selskabs Skrifter 8: 217-272.

92)  Marcgravus, G. (1648). Historiae rerum naturalium Brasiliae, libri octo. Franciscus Hackius, Leiden.

93)  Martin, G. M. (2009). Sobre la identidad de Thylamys (Marsupialia, Didelphidae) del oeste pampeano y centro-sur del espinal, Argentina. Mastozoología Neotropical 16 (2): 333-346.

94)  Martin, G. M. (2016). Marmosa mexicana. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T40504A22173751. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-2.RLTS.T40504A22173751.en. Stand 30. Januar 2026.

95)  Martínez-Lanfranco, J. A., Flores, D., Jayat, J. P. & d’Elia, G. (2014). A new species of lutrine opossum, genus Lutreolina Thomas (Didelphidae), from the South American Yungas. Journal of Mammalogy 95 (2): 225-240.

96)  Matschie, P. (1916). Bemerkungen über die Gattung Didelphis L. Sitzungsberichte der Gesellschaft Naturforschender Freunde zu Berlin 1916: 259-272.

97)  Matschie, P. (1917). Einige neue Formen der Didelphis lanigera-Gruppe. Sitzungsberichte der Gesellschaft Naturforschender Freunde zu Berlin 1917: 280-294.

98)  Merriam, C. H. (1897). Descriptions of two murine opossums from Mexico. Proceedings of the Biological Society of Washington 11: 43-44.

99)  Mickoleit, G. (2004). Phylogenetische Systematik der Wirbeltiere. Verlag Dr. Friedrich Pfeil, München.

100)         Miller, G. S. Jr. & Kellogg, R. (1955). List of North American recent mammals. Bulletin of the United States National Museum 205: 1-976.

101)         Miranda, C. L., Nunes, M. D. S., Machado, A. F., Farias, I. P., Menezes, F. H., Ardente, N. C., dos Santos-Filho, M., Bredin, Y. K. & da Silva, M. N. F. (2023). A new species of jupati, genus Metachirus Burmeister 1854 (Didelphimorphia, Didelphidae) for the Brazilian Amazon. Mammalia 87 (2): 172-189.

102)         Mondolfi, E. & Pérez-Hernández, R. (1984). Una nueva subespecie de zarigüeya del grupa Didelphis albiventris (Mammalia – Marsupialia). Acta Científica Venezolana 35 (5-6): 407-413.

103)         Mosqueda-Cabrera, M. Á., Sánchez-Miranda, E., Castillo-Loeza, L. D., Torres-Carrera, G. & García-Prieto, L. (2025). A new neotropical species of Gnathostoma (Nematoda: Gnathostomatidae) from the northern four-eyed opossum Philander vossi (Marsupialia). Acta Parasitologica 70 (6): 216: 1-14.

104)         Müller, P. L. S. (1776). Des Ritters Carl von Linné vollständigen Natursystems Supplements- und Register-Band über alle sechs Theile oder Classen des Thierreichs. Gabriel Nicolaus Raspe, Nürnberg.

105)         Muirhead, L. (1819). Mazology. S. 393-486 in: Brewster, D. (1819). The Edinburgh Encyclopaedia. William Blackwood, Edinburgh.

106)         Murray, A. (1866). The Geographical Distribution of Mammals. Day and Son, London.

107)         Negreiros Almeida, M. R., Lima da Fonseca, W., Medeiros Borges, L. H. & Sérgio Bernarde, P. (2024). Predation by the Pebas four-eyed opossums Philander pebas on the toad Rhinella margaritifera in the west Brazilian Amazon. Thery Notes 5 (2): 167-171.

108)         Nunes, C., Ayres, J. M., Sampaio, I. & Schneider, H. (2006). Molecular discrimination of pouched four-eyed opossums from the Mamirauá Reserve in the Brazilian Amazon. Genetics and Molecular Biology 29 (2): 283-286.

109)         O`Connell, M. A. (1983). Marmosa robinsoni. Mammalian Species 15 (203): 1-6.

110)         Oliveira, É. V., Villa Nova, P., Goin, F. J. & Avilla, L. dos S. (2011). A new hyladelphine marsupial (Didelphimorphia, Didelphidae) from cave deposits of northern Brazil. Zootaxa 3041 (1): 51-62.

111)         Osgood, W. H. (1913). New Peruvian mammals. Field Museum of Natural History, Zoological Series 10 (9): 93-100.

112)         Osgood, W. H. (1913). Two new mouse opossums from Yucatan. Proceedings of the Biological Society of Washington 26: 175-176.

113)         Osgood, W. H. (1914). Mammals of an expedition across northern Peru. Field Museum of Natural History, Zoological Series 10 (12): 143-185

114)         Panti-May, J. A., Chan-Casanova, A. J., Canche-Pool, E., Tello-Martín, R., Ruiz-Piña, H., Concha-Guillermo, H., Retana-Guiascón, O., Vega, P. P. M., Chablé-Santos, J., Estrella-Martínez, E., Moguel-Chin, W. I., Hernández-Orts, J. S., Hernández-Mena, D. I., Mendoza-Garfias, B. & García-Prieto, L. (2024). Morphological and molecular data on helminths of Didelphis virginiana and Philander vossi (Mammalia: Didelphidae) from the Yucatán Peninsula, southeast Mexico. Zootaxa 5463 (1): 1-24.

115)         Patton, J. L. & da Silva, M. N. F. (1997). Definition of species of pouched four-eyed opossums (Didelphidae, Philander). Journal of Mammalogy 78 (1): 90-102.

116)         Patton, J. L. & Percequillo, A. R. (2015). Monodelphis emiliae. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T13694A22170338. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T13694A22170338.en. Stand 30. Januar 2026.

117)         Pavan, S. E., Abreu, E. F., Sánchez-Vendizú, P. Y. & Voss, R. S. (2025). A new species of Marmosa (Mammalia: Didelphimorphia: Didelphidae) from Parque Nacional del Río Abiseo, Peru. American Museum Novitates 4037: 1-18.

118)         Pavan, S. E., Jansa, S. A. & Voss, R. S. (2014). Molecular phylogeny of short-tailed opossums (Didelphidae: Monodelphis): Taxonomic implications and tests of evolutionary hypotheses. Molecular Phylogenetics and Evolution 79 (1): 199-214.

119)         Pavan, S. E., Jansa, S. A. & Voss, R. S. (2016). Spatiotemporal diversification of a low-vagility Neotropical vertebrate clade (short-tailed opossums, Didelphidae: Monodelphis). Journal of Biogeography 43 (7): 1277-1477.

120)         Pavan, S. E., Rossi, R. V. & Schneider, H. (2012). Species diversity in the Monodelphis brevicaudata complex (Didelphimorphia: Didelphidae) inferred from molecular and morphological data, with the description of a new species. Zoological Journal of the Linnean Society 165 (1): 190-223.

121)         Pavan, S. E. & Voss, R. S. (2016). A revised subgeneric classification of short-tailed opossums (Didelphidae: Monodelphis). American Museum Novitates 3868: 1-44.

122)         Pérez-Hernández, R. (1989). Distribution of the family Didelphidae (Mammalia, Marsupialia) in Venezuela. S. 363-410 in: Redford, K. H. & Eisenberg, J. F. (Hrsg.) (1989). Avances in Neotropical Mammalogy. Sandhill Crane Press, Gainesville.

123)         Pérez-Hernández, R. (2016). Marmosa robinsoni. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T40506A22174162. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T40506A22174162.en. Stand 30. Januar 2026.

124)         Pérez-Hernández, R., Lew, D. & Solari, S. (2016). Didelphis virginiana. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T40502A22176259. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T40502A22176259.en. Stand 30. Januar 2026.

125)         Pérez-Hernández, R., López Fuster, M., & Ventura, J. (2016). Marmosa tyleriana. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T12816A22174266. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T12816A22174266.en. Stand 30. Januar 2026.

126)         Pérez-Hernández, R., López Fuster, M., & Ventura, J. (2016). Marmosa xerophila. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T12815A115106154. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-3.RLTS.T12815A22174448.en. Stand 30. Januar 2026.

127)         Pérez-Hernández, R., López Fuster, M., Ventura, J. & Lew, D. (2016). Didelphis imperfecta. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136592A22176554. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T136592A22176554.en. Stand 30. Januar 2026.

128)         Pérez-Hernández, R., Solari, S., Tarifa, T. & Lew, D. (2016). Didelphis pernigra. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136395A22176668. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T136395A22176668.en. Stand 30. Januar 2026.

129)         Pérez-Hernández, R., Soriano, P. & Lew, D. (1994). Marsupiales de Venezuela. Cuadernos Lagoven, Caracas.

130)         Pérez-Hernández, R., Ventura, J. & López Fuster, M. (2016). Monodelphis reigi. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136392A22170127. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T136392A22170127.en. Stand 30. Januar 2026.

131)         Pérez-Hernández, R., Ventura, J. & López Fuster, M. (2016). Philander deltae. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136227A22177383. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T136227A22177383.en. Stand 30. Januar 2026.

132)         Pérez-Hernández, R., Ventura, J. & López Fuster, M. (2016). Philander mondolfii. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T136202A22176945. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T136202A22176945.en. Stand 30. Januar 2026.

133)         Pine, R. H. (1972). A new subgenus and species of murine opossum (genus Marmosa) from Peru. Journal of Mammalogy 53 (2): 279-282.

134)         Pine, R. H., Flores, D. A. & Bauer, K. (2013). The second known specimen of Monodelphis unistriata (Wagner) (Mammalia: Didelphimorphia), with redescription of the species and phylogenetic analysis. Zootaxa 3640 (3): 425-441.

135)         Pohle, H. (1927). Über die von Prof. Bresslau in Brasilien gesammelten Säugetiere (außer den Nagetieren). Abhandlungen der Senckenbergischen naturforschenden Gesellschaft 40: 239-247.

136)         Rafinesque, C. S. (1815). Analyse de la nature ou tableau de l’univers et des corps organisés. Aux dépens de l’Auteur, Palermo.

137)         Rehn, J. A. (1900). On the Linnaean genera Myrmecophaga and Didelphis. The American Naturalist 34 (403): 575-577.

138)         Rivillas, C., Caro, F., Carvajal, H. & Vélez, I. (2004). Algunos tremá todos digé neos (Rhopaliasidae, Opistorchiidae) de Phillander opossum (Marsupialia: Mammalia) de la costa Pacífica Colombiana, incluyendo Rhopalias caucensis n. sp. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 28 (109): 591-600.

139)         Rossi, R. V. (2005). Revisão taxonômica de Marmosa Gray, 1821 (Didelphimorphia, Didelphidae). PhD Thesis, Universidade de São Paulo, São Paulo.

140)         Rossi, R. V., Voss, R. S. & Lunde, D. P. (2010). A revision of the didelphid marsupial genus Marmosa. Part 1. The species in Tate’s ‘mexicana‘ and ‘mitis’ sections and other closely related forms. Bulletin of the American Museum of Natural History 334 (1): 1-83.

141)         Sanborn, C. C. (1951). Two new mammals from southern Peru. Fieldiana Zoology 31 (44): 473-477.

142)         Sanderson, I. T. (1949). A brief review of the mammals of Suriname (Dutch Guiana), based upon a collection made in 1938. Proceedings of the Zoological Society of London 119 (3): 755-789.

143)         Schmarda, L. K. (1853). Die geographische Verbreitung der Thiere. Zweites Buch: Die Thierwelt des Festlandes. II. Abteilung. Carl Gerold und Sohn, Wien.

144)         Solari, S. (2007). New species of Monodelphis (Didelphimorphia: Didelphidae) from Peru, with notes on M. adusta (Thomas, 1897). Journal of Mammalogy 88 (2): 319-329.

145)         Solari, S. (2010). A molecular perspective on the diversification of short-tailed opossums (Monodelphis: Didelphidae). Mastozoología Neotropical 17 (2): 317-333.

146)         Solari, S. (2015). Marmosa andersoni. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T12812A22174790. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T12812A22174790.en. Stand 30. Januar 2026.

147)         Solari, S. (2015). Marmosa quichua. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T136508A22173866. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T136508A22173866.en. Stand 30. Januar 2026.

148)         Solari, S. (2015). Marmosa rubra. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T40507A22174358. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T40507A22174358.en. Stand 30. Januar 2026.

149)         Solari, S. (2016). Monodelphis handleyi. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T199833A115345427. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-3.RLTS.T199833A22171921.en. Stand 30. Januar 2026.

150)         Solari, S. & Cáceres, N. (2015). Caluromysiops irrupta. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T3651A97206475. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T3651A22172207.en. Stand 30. Januar 2026.

151)         Solari, S. & Lew, D. (2015). Caluromys derbianus. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T3650A22175821. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T3650A22175821.en. Stand 30. Januar 2026.

152)         Solari, S. & Martin, G. M. (2016). Glironia venusta. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T9245A22179598. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T9245A22179598.en. Stand 30. Januar 2026.

153)         Solari, S., Pacheco, V., Vivar, E. & Emmons, L. H. (2012). A new species of Monodelphis (Mammalia: Didelphimorphia: Didelphidae) from the montane forest of central Perú. Proceedings of the Biological Society of Washington 125 (3): 295-307.

154)         Solari, S. & Pine, R. H. (2008). Rediscovery and redescription of Marmosa (Stegomarmosa) andersoni Pine (Mammalia: Didelphimorphia: Didelphidae), an endemic Peruvian mouse opossum, with a reassessment of ist affinities. Zootaxa 1756 (1): 49-61.

155)         Solari, S., & Tarifa, T. (2015). Monodelphis adusta. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T51343071A22170648. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T5134307A22170648.en. Stand 30. Januar 2026.

156)         Solari, S., & Tarifa, T. (2015). Monodelphis osgoodi. The IUCN Red List of Threatened Species 2015: e.T13698A22171354. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2015-4.RLTS.T13698A22171354.en. Stand 30. Januar 2026.

157)         Solari, S., Tarifa, T., Astúa, D. & Cáceres, N. (2021). Marmosa regina. The IUCN Red List of Threatened Species 2021: e.T40511A197309306. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2021-1.RLTS.T40511A197309306.en. Stand 30. Januar 2026.

158)         Svartman, M. (2009). American marsupials chromosomes: why study them? Genetics and Molecular Biology 32 (4): 675-687.

159)         Tarifa, T. & Martin, G. M. (2016). Marmosa constantiae. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T13297A22174957. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016-1.RLTS.T13297A22174957.en. Stand 30. Januar 2026.

160)         Tate, G. H. H. (1931). Brief diagnoses of twenty-six apparently new forms of Marmosa (Marsupialia) from South America. American Museum Novitates 493: 1-14.

161)         Tate, G. H. H. (1933). A systematic revision of the marsupial genus Marmosa, with a discussion of the adaptive radiation of the murine opossums (Marmosa). Bulletin of the American Museum of Natural History 66 (1): 1-250.

162)         Tate, G. H. H. (1939). The mammals of the Guiana Region. Bulletin of the American Museum of Natural History 76 (5): 151-229.

163)         Temminck, C. J. (1824). Livraisons 1-3. S. 1-72 in: Temminck, C. J. (1827). Monographies de Mammalogie. G. Dufour et E. d’Ocagne, Paris.

164)         Teta, P., D’Elía, G., Flores, D. & de La Sancha, N. (2009). Diversity and distribution of the mouse opossums of the genus Thylamys (Didelphimorphia, Didelphidae) in northeastern and central Argentina. Gayana 73 (2): 180-199.

165)         Thomas, O. (1888). Diagnoses of four new species of Didelphys. Annals and Magazine of Natural History, 6th Series 1 (2): 158-159.

166)         Thomas, O. (1894). On two new Neotropical mammals. Annals and Magazin, 6th Series 13 (77): 436-439.

167)         Thomas, O. (1896). On new small mammals from the Neotropical region. Annals and Magazine of Natural History, 6th Series 18 (106): 301-314.

168)         Thomas, O. (1899). Descriptions of new mammals from South America. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 2 (9): 265-275.

169)         Thomas, O. (1899). Descriptions of new Neotropical mammals. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 4 (22): 278-288.

170)         Thomas, O. (1899). On new small mammals from South America. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 3 (14): 152-155.

171)         Thomas, O. (1899). On some small mammals from the District of Cuzco, Peru. Annals and Magazine of Natural History 7th Series 3 (13): 40-44.

172)         Thomas, O. (1901). New Myotis, Artibeus, Sylvilagus, and Metachirus from Central and South America. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 7 (42): 541-545.

173)         Thomas, O. (1901). New South-American Sciuri, Heteromys, Cavia, and Caluromys. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 7 (38): 192-196.

174)         Thomas, O. (1903). New forms of Sciurus, Oxymycterus, Kannabateomys, Proechimys, Dasyprocta, and Caluromys from South America. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 11 (65): 487-493.

175)         Thomas, O. (1904). New Sciurus, Rhipidomys, Sylvilagus, and Caluromys from Venezuela. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 14 (79): 33-37.

176)         Thomas, O. (1904). On the mammals collected by Mr. A. Robert at Chapada, Matto Grosso (Percy Sladen Expedition to central Brazil). Proceedings of the Zoological Society of London 73 (2): 232-244.

177)         Thomas, O. (1904). Two new mammals from South America. Annals and Magazine of Natural History, 7th Series 13 (74): 142-144.

178)         Thomas, O. (1912). A new genus of opossums and a new tuco-tuco. Annals and Magazine of Natural History, 8th Series 9 (50): 239-241.

179)         Thomas, O. (1912). On small mammals from the Lower Amazon. Annals and Magazine of Natural History, 8th Series 9 (49): 84-90.

180)         Thomas, O. (1913). The geographical races of the woolly opossum (Philander laniger). Annals and Magazine of Natural History, 8th Series 12 (70): 358-361.

181)         Thomas, O. (1920). A further collection of mammals from Jujuy. Annals and Magazine of Natural History, 9th Series 5 (26): 188-196.

182)         Thomas, O. (1921). Three new species of Marmosa, with a note on Didelphys waterhousei, Tomes. Annals and Maganzine of Natural History, 9th Series 7 (42): 519-523.

183)         Thomas, O. (1923). New subspecies of Metachirus. Annals and Magazine of Natural History, 9th Series 11 (65): 602-607.

184)         Thomas, O. (1924). On a collection of mammals made by Mr. Latham Rutter in the Peruvian Amazons. Annals and Magazine of Natural History, 9th Series 13 (77): 530-538.

185)         Thomas, O. (1928). The Godman-Thomas expedition to Peru. VII. The mammals of the Rio Ucayali. Annals and Magazine of Natural History, 10th Series 2 (9): 249-265.

186)         Tiedemann, F. (1808). Zoologie. Zu seinen Vorlesungen entworfen. Erster Band. Allgemeine Zoologie, Mensch und Säugetiere. Webersche Buchhandlung, Landshut.

187)         Tomes, R. F. (1860). Description of a new species of opossum, obtained by Mr. Fraser in Ecuador. Proceedings of the Zoological Society of London 28 (1): 58-60.

188)         Trouessart, É. L. (1905). Fasciculus 3-4. S. 547-929 in: Trouessart, É. L. (1905). Catalogue mammalium tam viventium quam fossilium. Quinquennale supplementum anno 1904. R. Friedländer & Sohn, Berlin.

189)         Vieira, C. L. G. C. (2006). Sistemática do jupati Metachirus Burmeister, 1854 (Mammalia: Didelphimorphia). MS Thesis, Universidad Federal do Espírito Santo, Vitória.

190)         Vieira, C. O. da C. (1950). Xenartros e marsupiais do Estado de São Paulo. Arquivos de Zoologia do Estado de São Paulo 7: 325-362.

191)         Vilela, J. F., de Moraes Russo, C. A. & de Oliveira, J. A. (2010). An assessment of morphometric and molecular variation in Monodelphis dimidiata (Wagner, 1847) (Didelphimorphia: Didelphidae). Zootaxa 2646: 26-42

192)         Von Olfers, I. (1818). Bemerkungen zu Illiger’s Ueberblick der Säugthiere, nach ihrer Vertheilung über die Welttheile, rücksichtlich der Südamericanischen Arten (Species). S. 192-237 in: Eschwege, W. L. (1818). Journal von Brasilien, oder vermischte Nachrichten aus Brasilien, auf wissenschaftlichen Reisen gesammelt. Zweiter Heft. Herzoglich Sächsisch Privilegirtes Landes-Industrie-Comptoir, Weimar.

193)         Von Pelzeln, A. (1883). Brasilische Säugethiere. Resultate von Johann Natterer‘s Reisen in den Jahren 1817 bis 1835. Verhandlungen der Kaiserlich-Königlichen Zoologisch-Botanischen Gesellschaft in Wien 33 (Supplement): 1-140.

194)         Von Schreber, J. C. D. (1777). Didelphys? Macrotarsos. Tafel 155 in: Von Schreber, J. C. D. (1777). Die Säugthiere in Abbildungen nach der Natur, mit Beschreibungen. Expedition des Schreber’schen Säugthiere- und des Esper’schen Schmetterlingswerkes, Erlangen.

195)         Von Tschudi, J. J. (1844). Mammalium conspectus quae in Republica Peruana reperiuntur et pleraque observata vel collecta sunt in itinere. Archiv für Naturgeschichte 10 (1): 244-255.

196)         Von Tschudi, J. J. (1844). Untersuchungen über die Fauna Peruana. Therologie. Scheitlin und Zollikofer, Sankt Gallen.

197)         Voss, R. S. (2022). An annotated checklist of recent opossums (Mammalia: Didelphidae). Bulletin of the American Museum of Natural History 455 (1): 1-76.

198)         Voss, R. S., Díaz-Nieto, J. F. & Jansa, S. A. (2018). A revision of Philander (Marsupialia: Didelphidae), Part 1: P. quica, P. canus, and a new species from Amazonia. American Museum Novitates 3891: 1-70.

199)         Voss, R. S., Fleck, D. W. & Jansa, S. A. (2019). Mammalian diversity and Matses ethnomammalogy in Amazonian Peru part 3: Marsupials (Didelphimorphia). Bulletin of the American Museum of Natural History 432: 1-87.

200)         Voss, R. S., Gardner, A. L. & Jansa, S. A. (2004). On the relationships of “Marmosa” formosa Shamel, 1930 (Marsupialia: Didelphidae), a phylogenetic puzzle from the Chaco of northern Argentina. American Museum Novitates 3442: 1-18.

201)         Voss, R. S. & Giarla, T. C. (2020). A revision of Philander (Marsupialia: Didelphidae), Part 2: Phylogenetic relationships and morphological diagnosis of P. nigratus Thomas, 1923. American Museum Novitates 3955: 1-16.

202)         Voss, R. S. & Giarla, T. C. (2020). Case 3831 – Marmosa isthmica Goldman, 1912 (Mammalia, Didelphimorphia, Didelphidae): Proposal to conserve current usage by suppressing ist senior synonym, Marmosa regina Thomas, 1898. Bulletin of Zoological Nomenclature 77: 131-134.

203)         Voss, R. S., Giarla, T. C., Díaz-Nieto, J. F. & Jansa, S. A. (2020). A revision of the didelphid marsupials genus Marmosa part 2. Species of the rapposa group (subgenus Micoureus). Bulletin of the American Museum of Natural History 439 (1): 1-60.

204)         Voss, R. S., Gutiérrez, E. E., Solari, S., Rossi, R. V. & Jansa, S. A. (2014). Phylogenetic relationships of mouse opossums (Didelphidae, Marmosa) with a revised subgeneric classification and notes on sympatric diversity. American Museum Novitates 3817: 1-17.

205)         Voss, R. S. & Jansa, S. A. (2003). Phylogenetic studies on didelphid marsupials II. Nonmolecualar data and new IRBP sequences: separate and combined analyses of didelphine relationships with denser taxon sampling. Bulletin of the American Museum of Natural History 276: 1-82.

206)         Voss, R. S. & Jansa, S. A. (2009). Phylogenetic relationships and classification of didelphid marsupials, an extant radiation of new world metatherian mammals. Bulletin of the American Museum of Natural History 322: 1-177.

207)         Voss, R. S., Lunde, D. P. & Jansa, S. A. (2005). On the contents of Gracilinanus Gardner and Creighton, 1989, with the description of a previously unrecognized clade of small didelphid marsupials. American Museum NoviTates 3482: 1-34.

208)         Voss, R. S., Lunde, D. P. & Simmons, N. B. (2001). The mammals of Paracou, French Guiana: a neotropical lowland rainforest fauna part 2. Nonvolant species. Bulletin of the American Museum of Natural History 263: 1-236.

209)         Voss, R. S., Pine, R. H. & Solari, S. (2012). A new species of the didelphid marsupial genus Monodelphis from Eastern Bolivia. American Museum NoviTates 3740: 1-14.

210)         Voss, R. S., Tarifa, T. & Yensen, E. (2004).  An introduction to Marmosops (Marsupialia: Didelphidae), with the description of a new species from Bolivia and notes on the taxonomy and distribution of other bolivian forms. American Museum NoviTates 3466: 1-40.

211)         Wagner, J. A. (1842). Diagnosen neuer Arten brasilischer Säugthiere. Archiv für Naturgeschichte 8 (1): 356-362.

212)         Waterhouse, G. R. (1841). The Naturalist’s Library. Mammalia. Vol. XI. Marsupialia or Pouched Animals. W. H. Lizars, Edinburgh.

213)         Westheide, W. & Rieger, R. (Hrsg.) (2010). Spezielle Zoologie Teil 2: Wirbel- oder Schädeltiere – 2. Auflage. Spektrum Akademischer Verlag, Heidelberg.

214)         Wied-Neuwied, M. (1826). Beiträge zur Naturgeschichte von Brasilien. II. Band. Landes-Industrie-Comptoir, Weimar.

215)         Woodman, N., Timm, R. M., Arana C., R., Pacheco, V., Schmidt, C. A., Hooper, E. D. & Pacheco A., C. (1991). Annoted checklist of the mammals of Cuzco Amazonico, Peru. Occasional Papers of the Museum of Natural History, University of Kansas 145: 1-12.

216)         Zijlstra, J. S. (2025). Hesperomys Project (Version 25.12.0). http://hesperomys.com.

217)         Zimmermann, E. A. W. (1783). Geographische Geschichte des Menschen, und der vierfüßigen Thiere. Dritter Band. Weygandsche Buchhandlung, Leipzig.

 

 

Letztes Update 01.03.2026

Home

Index

Seitenanfang